NGHIÊN CỨU ẢNH HƯỞNG CỦA CHẾ PHẨM VI KHUẨN TÍA QUANG HỢP ĐẾN KHẢ NĂNG NẢY MẦM CỦA GIỐNG LÚA ST25 VÀ BT7KBL-02

Ngày nhận bài: 14-04-2025

Ngày duyệt đăng: 31-07-2025

Ngày xuất bản: 31-07-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2025.23.7.07

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 23 Số 7 (2025): Tạp chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Liên, Đỗ, Mai, C., Hằng, Đinh, Mai, T., Đào, T., & Công, L. (2025). NGHIÊN CỨU ẢNH HƯỞNG CỦA CHẾ PHẨM VI KHUẨN TÍA QUANG HỢP ĐẾN KHẢ NĂNG NẢY MẦM CỦA GIỐNG LÚA ST25 VÀ BT7KBL-02. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 23(7), 910–920. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2025.23.7.07

NGHIÊN CỨU ẢNH HƯỞNG CỦA CHẾ PHẨM VI KHUẨN TÍA QUANG HỢP ĐẾN KHẢ NĂNG NẢY MẦM CỦA GIỐNG LÚA ST25 VÀ BT7KBL-02

Đỗ Thị Liên (*) 1 , Cung Thị Ngọc Mai 1 , Đinh Thị Thu Hằng 2 , Trần Thị Mai 1 , Trần Thị Đào 3 , Lê Thị Nhi Công 1

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Viện Sinh học, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
  • 2 Học viện Khoa học và Công nghệ, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
  • 3 Khoa Công nghệ sinh học, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    BT7KBL-02, ST25, khả năng chịu mặn, sự nảy mầm, vi khuẩn tía quang hợp

    Tóm tắt


    Mục tiêu của nghiên cứu là đánh giá tác động của chế phẩm vi khuẩn tía quang hợp dạng lỏng và dạng rắn lên sự nảy mầm của hạt, sự phát triển của cây con và khả năng chống chịu mặn của giống lúa ST25 và BT7KBL-02. Sử dụng các phương pháp thường quy như đánh giá khả năng kích thích nảy mầm, đánh giá ảnh hưởng của chế phẩm đến sự phát triển của chồi mầm và rễ mầm, đánh giá khả năng chịu mặn của cây mầm, phương pháp xử lý thống kê sinh học. Kết quả thí nghiệm cho thấy: bổ sung chế phẩm vi khuẩn tía quang hợp dạng lỏng và dạng rắn đều giúp tăng tỷ lệ nảy mầm, tăng chiều dài rễ mầm, tăng chiều dài chồi mầm và khả năng chịu mặn của cả 2 giống lúa nghiên cứu. Tỉ lệ nảy mầm của giống lúa ST25 tăng từ 1,2-2,5% và BT7KBL-02 tăng từ 1,2-1,7%; chiều dài rễ mầm tăng lên gấp
    1,50-1,53 lần (giống ST25) và tăng gấp 1,47-1,67 lần (giống BT7KBL-02); chiều dài chồi mầm cũng tăng lên gấp
    1,41-1,45 lần (giống ST25) và 1,6-1,65 lần (giống BT7KBL-02) so các chỉ tiêu nghiên cứu ở các công thức đối chứng. Ở giai đoạn cây mầm, chồi mầm và rễ mầm ở các công thức thí nghiệm tiếp tục phát triển tốt hơn so với đối chứng, trong đó, chiều dài rễ mầm gấp 1,36-1,41 lần (giống ST25) và 1,21-1,43 lần (giống BT7KBL-02), chiều dài chồi mầm gấp 1,16-1,3 lần (giống lúa ST25) và 1,6-1,7 lần (giống BT7KBL-02). Việc bổ sung chế phẩm vi khuẩn tía quang hợp cũng giúp cây mầm tăng khả năng chịu mặn ở nồng độ NaCl 50mM và 100mM.

    Tài liệu tham khảo

    Abul-Baki A.A. & Anderson J.D. (1973). Vigour determination in soybean by multiple criteria, Crop Science. 3: 630-637.

    Chakraborti S., Bera K., Sadhukhan S. & Dutta P. (2022). Bio-priming of seeds: Plant stress management and its underlying cellular, biochemical and molecular mechanisms. Plant Stress. 3: 100052.

    Elbadry M, Gamal-Eldin H, and Elbanna K. (1999b). Effects of Rhodobacter capsulatus inoculation in combination with graded levels of nitrogen fertilizer on growth and yield of rice in pots and lysimer experiments. World J Microbiol Biotechnol. 15: 393-395.

    Elbadry M., El-Bassel A. & Elbanna K. (1999a). Occurrence and dynamics of phototrophic purple nonsulphur bacteria compared with other asymbiotic nitrogen fixers in ricefields of Egypt. World J Microbiol Biotechnol 15: 359-362.

    Hanapi S.Z., Supari N., Alam S.A.Z. & Sarmidi M.R. (2014). Microbial effects on seed germination in Malaysian rice (Oryza sativa L.). Proceeding of the Asia-Pacific Advanced Network. 37: 42-51. http://dx.doi.org/10.3390/microorganisms10112197

    Hussain S. (2015). Benefits of rice seed priming are offset permanently by prolonged storage and the storage conditions, Scientific Reports. 5: 81-101.

    Imhoff J.F. & Trueper H.G. (1989). Purple non-sulfur bacteria (Rhodospirillaceae Pfennig and Trueper 197, 17AL), P: 1438-1680. In: Staley JT; Bryant M P; Pfennig N, and Holt JG. (eds.). Bergey’ manual of Systematic Bacteriology. Vol. 3. Williams and Wilkins. Baltimore.

    Iwai R., Uchida S., Yamaguchi S., Sonoda F., Tsunoda K., Nagata H., Nagata D., Koga A., Goto M., Maki T. & Miyasaka H.(2022). Effects of Seed Bio -Priming by Purple Non-Sulfur Bacteria (PNSB) on the Root Development of Rice. Microorganisms. 10: 2197.

    Kantachote D., Kornochalert N. & Chaiprapat S. (2010). The use of purple non sulfur bacterium isolate P1and fermented pineapple extract to treat latex rubber sheet wastewater for possible use as irrigation water. African journal of Microbiology Research. 4(21): 2296-2308.

    Kibinza S., Bazin J., Bailly C., Farrant J.M., Corbineau F. & El-Maarouf-Bouteau H. (2011). Catalase is a key enzyme in seed recovery from ageing during priming, Plant Science. 181(3): 309-315.

    Koh Hyun R. & Song H.G. (2007). Effects of Application of Rhodopseudomonas sp. on Seed Germination and Growth of Tomato Under Axenic Conditions J Microbiol. Biotechnol. 17(11): 1805-1810.

    Madigan M.T., Martinko J.M. & Parker J. (2000). Brock Biology of Microorganisms. 9thedn, Prentice-Hall Inc.

    Madukasi E.I., Chunhua H., Zhang G. (2011). Isolation and application of a wild strain photosynthetic bacterium to environmental waste management. J.Environ. Sci. Tech. 8(3): 513-522.

    Nakhoda B., Leung H., Mendioro M.S., Nejad G.M. & Ismail A.M. (2012). Isolation, characterization, and field evaluation of rice (Oryza sativa L., Var. IR64) mutants with altered responses to salt stress. Field Crops Res 127:191- 202.

    Nunkaew T., Kantachote D., Nitoda T. & Kanzaki H. (2015). Selection of salt tolerant purple non-sulfur bacteria producing 5-aminolevulinic acid (ALA) and reducing methane emissions from microbial rice straw degradation. Appl Soil Ecol. 86: 113-120.

    Panwichian S., Kantachote D., Wittayaweerasak B. & Mallavarapu M.(2011). Removal of heavy metals by exopolymeric substances produced by resistant purple non-sulfur bacteria isolated from contaminated shrimp ponds. Electron J Biotechn. 14(4). http://dx.doi.org/10.2225/vol14-issue4-fulltext-2.

    Raj S.N., Shetty N.P.; Shetty H.S. (2024). Seed bio-priming with Pseudomonas fluorescens isolates enhances growth of pearl millet plants and induces resistance against downy mildew. Int. J. Pest Manag. 50: 41-48.

    Sahi C., Singh A., Blumwald E. & Grover A. (2006). Beyond osmolytes and transporters: novel plant salt stress tolerance-related genes fromtranscriptional profiling data. Plant Physiol. 127: 1-9.

    Sasikala C. & Ramana C.V. (1995). Biotechnological potential of photosynthetic bacteria I: Production of single cell protein, vitamins, ubiquinone, hormones, and enzymes and use in waste treatment. Advances and Applied Microbiology. (41): 173-225.

    Scott S., Jones R. & Williams W. (1984). Review of data analysis methods for seed germination, Crop Science. 24: 1192-1199.

    Sharma K.K., Singh D., Sapna B.S. & Kuhad R.C. (2013). Ligninolytic Enzymes in Environmental Management. In Biotechnology for Environmental Management and Resource Recovery, ed., Kuhad, K.C.; Singh, A. Springer. India. pp. 219-38.