KHẢO SÁT MỘT SỐ ĐẶC TÍNH SINH HỌC VÀ ĐỊNH DANH NẤM MEN ĐƯỢC PHÂN LẬP TỪ BÁNH MEN RƯỢU Ở ĐỒNG BẰNG SÔNG CỬU LONG

Ngày nhận bài: 06-06-2025

Ngày xuất bản: 13-06-2025

Lượt xem

0

Download

0

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Thanh, N., Duyên, N., Lam, B., & Trạch, N. (2025). KHẢO SÁT MỘT SỐ ĐẶC TÍNH SINH HỌC VÀ ĐỊNH DANH NẤM MEN ĐƯỢC PHÂN LẬP TỪ BÁNH MEN RƯỢU Ở ĐỒNG BẰNG SÔNG CỬU LONG. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 10(2). https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2012.10.2.

KHẢO SÁT MỘT SỐ ĐẶC TÍNH SINH HỌC VÀ ĐỊNH DANH NẤM MEN ĐƯỢC PHÂN LẬP TỪ BÁNH MEN RƯỢU Ở ĐỒNG BẰNG SÔNG CỬU LONG

Nguyễn Hữu Thanh (*) 1, 2 , Nguyễn Thị Kỳ Duyên 1, 2 , Bằng Hồng Lam 1, 2 , Nguyễn Quang Trạch 1, 2

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Bộ môn Công nghệ Sinh học, Đại học An Giang,
  • 2 Viện Sinh học Nông nghiệp, Đại học Nông nghiệp Hà Nội
  • Từ khóa

    Saccharomyces cerevisiae, sinh H2S, rượu gạo

    Tóm tắt


    Bánh men được sản xuất ở Đồng bằng sông Cửu long (ĐBSCL) phần lớn ở dạng thủ công nên chứa nhiều: nấm men, vi khuẩn, nấm mốc.  Nấm men Saccharomyces cerevisiae có trong bánh men có vai trò chính trong quá trình lên men rượu.  Việc phân lập các chủng nấm men tại ĐBSCL phục vụ cho sản xuất rượu rất quan trọng vì các chủng này phù hợp với điều kiện khí hậu, đất, nước…Từ bánh men rượu ở ĐBSCL đã phân lập được 128 chủng, trong đó phát hiện được 30 chủng chịu nhiệt ở 50°C đồng thời chịu cồn 17ml/L, sinh bào tử và lắng tốt, 10 trong số đó không sinh H2S. Giải mã trình tự 10 chủng, 7 chủng xác định là Saccharomyces cerevisiae, 3 chủng là Clavispora lusitaniae.

    Tài liệu tham khảo

    Amoore, J.E and E. Hautala (1983). Odor as an aid to chemical safety: odor thresholds compared with threshold limit values and volatilities for 214 industrial chemicals in air and water dilution. Journal of Applied Toxicology 3, 272-290.

    Đồng Thị Thanh Thu (2003). Sinh hóa ứng dụng, TP HCM, NXB Đại học Quốc gia.

    Guimarães Thais M., G. Moriel Danilo, P. Machado Iara, M.T. Cyntia, Fadel Picheth, M. Tania and B. Bonfim (2006). Isolation and characterization of Saccharomyces cerevisiae strains of winery interest. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences vol. 42. n. 1. Jan. /Mar.

    Ngô Thị Phương Dung, Rombouts and Nout (2005). Development of defined mixed-culture fungal fermentation starter granulates for controlled production of rice wine. Innovative Food Science & Emerging Technologies, Volume 6, Issue 4, 1 December 2005, Pages 429-441.

    Oliveira VA, M.A.Vicente, L.G. Fietto, I.M. Castro, M.X. Coutrim, D. Schüller, R.L.Brandão and al (2008). Biochemical and Molecular Characterization of Saccharomyces cerevisiae strains Obtained from Sugar-Cane Juice Fermentations and Their impact in Cachaca Production. Appl. Environ. Microbiol, vol. 74. p. 3693-3701.

    Ono, B. I, N. Ishi, S. Fujino, I. Aoyama (1991). I. Role ofhydrosulfide ions (HS-) in methylmercury resistance in Saccharomyces cerevisiae. Appl. Environ. Microbiol.v. 57, p. 3183-3186.

    Ralser (2010). Quick and Easy Isolation of Genomic DNA from Yeast. Acess online ngày 17/10/2010. http://www.protocol-online.org/prot/Protocols/Quick-and-Easy-Isolation-of-Genomic-DNA-from-Yeast-3451.html.

    Sandhu, G.S., B.C. Kline, L.Stockman and G.D. Roberts (1995). Molecular probes for diagnosis of fungal infections. J. Clin. Microbiol. 33:2913-2919.

    Vu Nguyen Thanh, Le Thuy Mai and Duong Anh Tuan (2008). Microbial diversity of traditional Vietnamese alcohol fermentation starters (banh men) as determined by PCR-mediated DGGE. International Journal of Food Microbiology. Volume 128, Issue 2, 10 December 2008, Pages 268-273.