NGHIÊN CỨU CHUYỂN GENE MẪN CẢM AUXIN (INO-ROLB) VÀO GIỐNG QUÝT ĐƯỜNG CANH VÀ CAM VINH

Ngày nhận bài: 07-06-2025

Ngày xuất bản: 13-06-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2013.11.6.

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 11 Số 6 (2013)

Chuyên mục:

NÔNG HỌC

Cách trích dẫn:

Tôn, P., Hải, T., Lư, Đoàn, Bách, N., & Dandenkar, A. . (2025). NGHIÊN CỨU CHUYỂN GENE MẪN CẢM AUXIN (INO-ROLB) VÀO GIỐNG QUÝT ĐƯỜNG CANH VÀ CAM VINH . Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 11(6). https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2013.11.6.

NGHIÊN CỨU CHUYỂN GENE MẪN CẢM AUXIN (INO-ROLB) VÀO GIỐNG QUÝT ĐƯỜNG CANH VÀ CAM VINH

Phan Hữu Tôn (*) 1, 2, 3, 4 , Tống Văn Hải 1, 2, 3, 4 , Đoàn Văn Lư 1, 2, 3, 4 , Nguyễn Đức Bách 1, 2, 3, 4 , Abhaya Dandenkar 1, 2, 3, 4

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Khoa Công nghệ Sinh học, Trường Đại học Nông nghiệp Hà Nội
  • 2 Trung tâm Bảo tồn và Phát triển Nguồn gen Cây trồng, Trường Đại học Nông nghiệp Hà Nội
  • 3 Khoa Nông học, Trường Đại học Nông nghiệp Hà Nội
  • 4 Đại học California UC David, USA

    • Từ khóa

    Acetosyringone, chuyển gene, cam quýt vô phối, vi khuẩn A. tumerfaciens, INO-rolB gen

    Tóm tắt


    Hiện tượng vô phối ở cây cam quýt thường cho quả không hạt, kích thước nhỏ và chất lượng kém. Nguyên nhân là do không có sự phát triển của phôi nên bầu nhụy không tổng hợp được auxin hoặc nồng độ auxin quá thấp không đủ kích thích được quả phát triển bình thường. Trong số các biện pháp tạo giống cam quýt không hạt như lai xa, tạo dòng tam bội, tạo đột biến, việc chuyển gene mẫn cảm auxin hoạt động đặc thù bầu nhụy đã mở ra hướng mới trong tạo giống cam quýt không hạt. Trong nghiên cứu này, vector pDU04.4522 mang gene mẫn cảm auxin (INO-rolB) chịu sự kiểm soát của promoter đặc thù bầu nhụy (INO) được chuyển vào trụ trên lá mầm các giống quýt Đường Canh và cam Vinh thông qua vi khuẩn Agrobacterium tumerfaciens chủng C58.  Nhằm xác định điều kiện tối ưu cho việc chuyển gene INO-rolB vào hai giống quýt Đường Canh và cam Vinh 4 thí nghiệm đã được tiến hành tập trung vào giai đoạn đồng nuôi cấy. Kết quả đã chuyển thành công gen mẫn cảm auxin (INO-rolB) vào giống quýt Đường Canh và cam Vinh thông qua vi khuẩn A. tumefaciens chủng C58. Hiệu quả chuyển gene đạt cao nhất ở giai đoạn đồng nuôi cấy, trong môi trường bổ sung 50 – 100mM acetosyringone và 2 mg/l NAA ở 22°C trong 3 ngày.

    Tài liệu tham khảo

    Alida et al. (2008). Evolution of selection strateges alternative to nptII in genetic transformation of Citrus. Plant Cell rep, 27: 105-115.

    Almeida W.A.B., Mourao Filho F.A.A., Mendes B.J.M et al. (2003). Agrobacterium – mediated transformation of Citrus sinensis and Citrus limonia epicotyl segments. Scientia Agricola, 60: 23-29.

    Boscariol et al. (2003). The use of the Mannose selection system to recover transgenic sweet orange plants. Plant Cell rep, 22: 122-128.

    Bond JE and Roose M.L. (1998). Agrobacterium-mediated transformation of the commercially important Citrus cultivar Washington navel orange. Plant Cell Reports, 18: 229-234.

    Carmi, N., Salts Y., B. Dedicova, Shabtai S. and Barg R. (2003). Induction of parthenocarpy in tomato via specific expression of the rolB gene in the ovary. Planta 217: 726-735.

    Changhe Y, Shu H., Paul L. and Gmitter (2002). Factors affecting Agrobacterium – mediated transformation and regeneration of sweet orange and citrange. Plant Cell rep, 19: 889-903.

    Cervera M., Navarro L., Pena, L . (1998). Agrobacterium–mediated transformation of citrange: factors affecting transformation and regeneration. Plant Cell Rep, 16: 271-278.

    Costa M.G.C., Otoni W.C. and Moore G.C. (2002). An evaluation of factors affecting the efficiency of Agrobacterium-mediated transformation of Citrus paradici (Macf) and production of transgenic plants containing caratenoid biosynthetic genes. Plan Cell Rep., 21: 365-373.

    Yan-Xin DUAN, Xin LIU, Jing FAN, Ding-Li LI, Reng-ChaoWU and Wen-Wu GUO (2006). Multiple shoot induction from seedling epicotyls and transgenic citrus plant regeneration containing the green fluorescent protein gene, Botanical Studies 48: 165-171.

    Dutt M. and Grosser J.W. (2009). Evaluation of parameters affecting Agrobacterium-mediated transformation of citrus. Plant Cells Tiss Organ Cult 98: 331-340.

    Ghorbel R., Domínguez A., Navarro L., Penña L.. (2000). High effeciency genetic transformation of sour orange and production of transgentic trees containing the coat protein gen of Citrus tristeza virus. Tree Physiology, 20: 183-189.

    Meister R.J., Williams L.A., Monfared M.M., Gallagher T.L., Kraft E.A., Nelson C.G., Gasser C.S. (2004). Definition and interaction of positive regulatory element of the Arabidopsic INNER NO OUTER promote. Plant J. 37:426-438.

    Moore G.A., Jacono J.L. et al. (1992). Agrobacterium-mediated transformation of Citrus stem segments and regeneration of transgenic plants. Plant Cell Rep, 11: 238-242

    Pena L., Cervera M. et al. (1995). High efficiency Agrobacterium-mediated transformation and regeneration of Citrus”. Plant Sci, 104:183-194.

    Pena L., Cervera M. et al. (2003). Agrobacterium – meadiated transformation of Citrus”. Plant Sci, 154:483-494.

    Pena L., Cervera M. et al. (2004). Early Events in Agrobacterium – meadiated Genetic”. Annals of Botany, 94: 67-74.