Ngày nhận bài: 06-06-2025
Ngày xuất bản: 13-06-2025
Lượt xem
Download
Cách trích dẫn:
NHÂN NHANH IN VITRO CÂY TRẦU BÀ CÁNH PHƯỢNG (Philodendron xanadu)
,
Nguyễn Thanh Hải
1
,
Nguyễn Thị Thùy Linh
1
,
Nguyễn Thị Thủy
1
,
Đặng Thị Thanh Tâm
1
,
Nguyễn Thị Phương Thảo (*)
1
Từ khóa
α-NAA, benzyl adenine (BA), IAA, IBA, kinetin (KI), nhân giống in vitro, than hoạt tính, trầu bà cánh phượng (Philodendron xanadu)
Tóm tắt
Quy trình nhân nhanh in vitro cây trầu bà cánh phượng (Philodendrom xanadu) được xây dựng dựa trên các thí nghiệm nuôi cấy khởi động, nhân nhanh và tạo rễ cho chồi in vitro. Trong giai đoạn nuôi cấy khởi động, nghiên cứu đã tiến hành nuôi cấy chồi đỉnh trên các môi trường MS có bổ sung benzyl adenine (BA) hay kinetin (KI). Kết quả cho thấy, môi trường MS bổ sung 4,0 mg/l BA là môi trường tối ưu, với 5,01 chồi/mẫu sau 4 tuần nuôi cấy. Nghiên cứu cũng đã tiến hành thí nghiệm sự ảnh hưởng phối hợp của cytokinin (BA) với auxin (IAA, IBA) để xác định môi trường nhân nhanh thích hợp. Trên môi trường nền MS có chứa 4,0 mg/l BA thì việc bổ sung thêm IAA hay IBA không làm tăng hệ số nhân nhanh. α-NAA hay than hoạt tính đều có ảnh hưởng tích cực đến sự hình thành rễ của chồi in vitro. Môi trường MS có bổ sung 1 g/L than hoạt tính là môi trường ra rễ thích hợp nhất sau 4 tuần nuôi cấy. Sau giai đoạn nhân in vitro, các cây con được chuyển sang điều kiện vườn ươm trên bốn loại giá thể. Tỉ lệ sống của cây con trên các giá thể khác nhau đạt 100% sau bốn tuần ra cây, trong đó, giá thể xơ dừa:trấu hun (tỉ lệ 1:1) cho chất lượng cây tốt nhất.
Tài liệu tham khảo
Malki Al., A.A.H.S., Elmeer K.M.S. (2009). Effect of medium strength and charcoal combined with IBA and NAA on root initiation of Ficus anastasia. Acad.J.Plant.Sci., 2(3): 169-172.
Boggetti, B., Jásik J., Mantell S.H. (2001). In vitro root formation in Anacardium occidentale microshoots. Biol. Plantarum, 44(2): 175-179.
Gangopadhyay G., Bandyopadhyay T., Basu Gangopadhyay S., Mukherjee K.K. (2004). Luffa sponge – a unique matrix for tissue culture of Philodendron. Curr. Sci., 86 (2): 315-319.
Jambor B.E. and Marta R.A. (1990). In vitro propagation of Philodendron tuxtlanum Bunting with benzylaminopurine. Acta Agron. Hung., 39: 341-348.
Jausoro V. (2008). Germinación y proliferación in vitro de lapacho rosado Tabebuia impetiginosa (Mart. ex DC) Standl. (Bignoniaceae). Thesis Biological Science Degree, National University of Luján.
Jirakiattikul Y. and Limpradithtanont P. (2006). Shoot multiplication and rooting of Philodendron xanadu cultured in vitro. Songklanakarin J. Sci. Technol., 28(1): 79-86
Koriesh E.M. and Al-Manie F.A. (2000). Growth and root formation of Philodendron oxycardium grown in vitro as affected by benzyladenine and indole acetic acid. Egypt. J. Hort., 27: 1-11.
Kumar D., Tiwari J.P. and Singh R. (1998). In vitro clonal propagation of Philodendron pertusum. Indian J. Hort., 55: 340-343.
Larraburu E.E., Apóstolo N.M., and Llorente B.E. (2012). In vitro propagation of pink lapacho: responese surface methodology and factorial analysis for optimisation of medium components. Int. J. Fores. Res., 1-9.
Murashige T., Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant, 15: 473-497.
Parida R., Mohanty S., Kuanar A., Nayak S. (2010). Rapid multiplication and in vitro production of leaf biomass in Kaempferia galanga through tissue culture. Electron J. Biotechnol., 13(4).
Sakakibara H. (2006). Cytokinins: Activity, Biosynthesis, and Translocation. Annu. Rev. Plant Biol., 57: 431-449.
Sreekumar S., Mukunthakumar S., Seeni S. (2001); Morphogenetic responses of six Philodendron cultivars in vitro. Indian J. Exp. Biol., 39(12):1280-1287.
Thakur A. and Kanwar J.S. (2008). Micropropagation of ‘Wild pear’ Pyrus pyrifolia (Burn F.) Nakai. II. induction of rooting. Not. Bot. Hort. Agrobot. Cluj., 36 (2):104-111.
Zhang P., Huang X., Xu X. and Ling D. (1997). Plant regeneration from in vitro culture of Philodendron erubescens. J. Trop. Subtrop. Bot., 5: 78-80.