Ngày nhận bài: 15-09-2025
Ngày duyệt đăng: 02-07-2026
Ngày xuất bản: 27-08-2026
Lượt xem
Download
Chuyên mục:
Cách trích dẫn:
ĐẶC ĐIỂM PHÁT TRIỂN VÀ ĐỘC LỰC CỦA Vibrio parahaemolyticus CED25.047 PHÂN LẬP TỪ TÔM THẺ CHÂN TRẮNG (Penaeus vannamei) GIAI ĐOẠN HẬU ẤU TRÙNG MẮC BỆNH MỜ ĐỤC
,
Nguyễn Thị Hạnh
1
,
Nguyễn Minh Quân
1
,
Nguyễn Thị Nguyện
1
,
Trương Thị Mỹ Hanh
1
,
Phan Trọng Bình (*)
2
,
Đặng Thị Lụa
1
Từ khóa
Tôm thẻ chân trắng, Penaeus vannamei, hội chứng mờ đục, độ mặn, độc lực
Tóm tắt
Nghiên cứu được thực hiện nhằm xác định đặc điểm gây bệnh của vi khuẩn Vibrio parahaemolyticus gây bệnh Translucent Postlarvae Disease (TPD) trên tôm thẻ chân trắng (Penaeus vannamei) giai đoạn tôm hậu ấu trùng, đồng thời đánh giá ảnh hưởng của độ mặn đến sự sinh trưởng của vi khuẩn. Mẫu tôm được phân tích để xác định tác nhân gây bệnh bằng cả phương pháp định danh truyền thống và kỹ thuật PCR. Tổng cộng 6 chủng V. parahaemolyticus đã được phân lập, có 2 chủng mang đồng thời 3 gen độc lực và 4 chủng mang đơn gen. Chủng V. parahaemolyticus mang 3 gen độc lực bệnh TPD được mã hóa CED25.047 đã được thử nghiệm ở 7 giá trị độ mặn khác nhau (5, 10, 15, 20, 25, 30 và 35‰). Kết quả cho thấy CED25.047 phát triển mạnh ở độ mặn từ 15-35‰, tối ưu ở 15-30‰ và bị ức chế ở độ mặn 5‰ và 10‰. Liều gây chết trung bình (LD50) gây chết ở thời điểm 18h và 40h với nồng độ vi khuẩn lần lượt là 1,1 × 106 CFU/ml và 5,0 × 103 CFU/ml. Quan sát biến đổi mô học đặc trưng ghi nhận các tổn thương điển hình ở gan tụy bao gồm hoại tử và thoái hóa tế bào ống gan tụy, bong tróc ống biểu mô, nhân co lại/biến dạng.
Tài liệu tham khảo
Chen K., Li E., Li T., Xu C., Wang X., Lin H., Qin J.G. & Chen L. (2015). Transcriptome and molecular pathway analysis of the hepatopancreas in the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei under chronic low-salinity stress. PLoS One. 10(7): e0131503. doi.org/10.1371/journal.pone.0131503. FAO (2023). International markets for fisheries and aquaculture products-Fourth issue 2023, with January–June 2023 statistics. GLOBEFISH Highlights, No. 4. Rome. https://doi.org/10.4060/cc9176en. Flegel T.W., Lightner D.V., Lo C.F. & Owens L. (2008). Shrimp disease control: past, present and future. Diseases in Asian Aquaculture VI. Fish Health Section, Asian Fisheries Society, Manila, Philippines. 505: 355-378. Harkell L. (2020). Shrimp Hatcheries in China Hit by ‘Glass Post-Larvae’. Retrieved from https://www.undercurrentnews.com/2020/04/22/shrimp-hatcheries-in-china-hit-by-glass-post-larvae/ ngày on July 03, 2025. Jia T., Liu S., Yu X., Xu T., Xia J., Zhao W., Wang W., Kong J. & Zhang Q. (2024). Prevalence investigation of translucent post-larvae disease (TPD) in China. Aquaculture 583: 740583. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2024.740583. Jia T., Xu T., Xia J., Liu S., Li W., Xu R., Kong J. & Zhang Q. (2023). Clinical protective effects of polyhexamethylene biguanide hydrochloride (PHMB) against Vibrio parahaemolyticus causing translucent post-larvae disease (VpTPD) in Penaeus vannamei. Journal of invertebrate pathology. 201: 108002. doi.org/10.1016/j.jip.2023.108002. Kalburge S.S., Whitaker W.B. & Boyd E.F. (2014). High-salt preadaptation of Vibrio parahaemolyticus enhances survival in response to lethal environmental stresses. Journal of food protection. 77(2): 246-253. doi.org/10.4315/0362-028X.JFP-13-241. Lightner D.V. (1996). A handbook of shrimp pathology and diagnostic procedures for diseases of cultured penaeid shrimp. World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA. Liu S., Wang W., Jia T., Xin L., Xu T.-t., Wang C., Xie G., Luo K., Li J. & Kong J. (2023). Vibrio parahaemolyticus becomes lethal to post-larvae shrimp via acquiring novel virulence factors. Microbiology Spectrum. 11(6): e00492-00423. https://doi.org/10.1128/spectrum.00492-23. Luo Z., Yu Y., Bao Z., Xiang J. & Li F. (2022). Evaluation of genomic selection for high salinity tolerance traits in Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture. 557: 738320. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738320. Maicá P.F., Borba M.R.d., Martins T.G. & Wasielesky Junior W. (2014). Effect of salinity on performance and body composition of Pacific white shrimp juveniles reared in a super-intensive system. Revista Brasileira de Zootecnia. 43: 343-350. doi.org/10.1590/S1516-35982014000700001. Rahi M.L., Azad K.N., Tabassum M., Irin H.H., Hossain K.S., Aziz D., Moshtaghi A. & Hurwood D.A. (2021). Effects of salinity on physiological, biochemical and gene expression parameters of black tiger shrimp (Penaeus monodon): Potential for farming in low-salinity environments. Biology. 10(12): 1220. doi.org/10.3390/biology10121220. Reed L.J. & Muench H. (1938). A simple method of estimating fifty per cent endpoints. American Journal of Hygiene. 27:493-497. Xu A., Xu S., Tu Q., Qiao H., Lin W., Li J., He Y., Xie T., Pan L. & Pan Q. (2023). A novel virus in the family Marnaviridae as a potential pathogen of Penaeus vannamei glass post-larvae disease. Virus research. 324: 199026. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2022.199026. Yang F., Xu L., Huang W. & Li F. (2022). Highly lethal Vibrio parahaemolyticus strains cause acute mortality in Penaeus vannamei post-larvae. Aquaculture. 548: 737605. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.737605. Ye Y., Zhu B., Zhang J., Yang Y., Tian J., Xu W., Du X., Huang Y., Li Y. & Zhao Y. (2023). Comparison of growth performance and biochemical components between low-salinity-tolerant hybrid and normal variety of pacific white shrimp (Penaeus vannamei). Animals. 13(18): 2837. https://doi.org/10.3390/ani13182837. Zou Y., Xie G., Jia T., Xu T., Wang C., Wan X., Li Y., Luo K., Bian X. & Wang X. (2020). Determination of the infectious agent of translucent post-larva disease (TPD) in Penaeus vannamei. Pathogens. 9(9): 741. doi.org/10.3390/pathogens9090741.