ẢNH HƯỞNG CỦA LỰA CHỌN GEN NỘI CHUẨN ĐẾN PHÂN TÍCH BIỂU HIỆN BDNF VÀ BACE1 TẠI VÙNG DƯỚI ĐỒI CHUỘT NHẮT TRẮNG TRONG MÔ HÌNH NHỊN ĂN - CHO ĂN LẠI

Ngày nhận bài: 03-04-2026

Ngày duyệt đăng: 22-09-2026

Ngày xuất bản: 26-10-2026

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2026.24.SP01.10

Lượt xem

2

Download

4

Số: Tập 24 Số đặc biệt 1 (2026): Tạp chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam

Chuyên mục:

CHĂN NUÔI – THÚ Y – THỦY SẢN

Cách trích dẫn:

Trung, N., Trà, V., Hương, P., & Hà, N. (2026). ẢNH HƯỞNG CỦA LỰA CHỌN GEN NỘI CHUẨN ĐẾN PHÂN TÍCH BIỂU HIỆN BDNF VÀ BACE1 TẠI VÙNG DƯỚI ĐỒI CHUỘT NHẮT TRẮNG TRONG MÔ HÌNH NHỊN ĂN - CHO ĂN LẠI. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 24(đặc biệt 1), 88–95. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2026.24.SP01.10

ẢNH HƯỞNG CỦA LỰA CHỌN GEN NỘI CHUẨN ĐẾN PHÂN TÍCH BIỂU HIỆN BDNF VÀ BACE1 TẠI VÙNG DƯỚI ĐỒI CHUỘT NHẮT TRẮNG TRONG MÔ HÌNH NHỊN ĂN - CHO ĂN LẠI

Nguyễn Thành Trung (*) 1 , Vũ Thị Thu Trà 1 , Phạm Thị Lan Hương 1 , Nguyễn Thị Thanh Hà 1

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Khoa Thú y, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    -actin, GAPDH, RT-qPCR, chuẩn hóa biểu hiện gen

    Tóm tắt


    Lựa chọn gen nội chuẩn phù hợp là điều kiện quan trọng để bảo đảm độ tin cậy của phân tích biểu hiện gen bằng RT-qPCR. Nghiên cứu này nhằm so sánh β-actin và GAPDH khi sử dụng làm gen nội chuẩn để đánh giá biểu hiện của BDNF và BACE1 tại vùng dưới đồi chuột trong mô hình nhịn ăn - cho ăn lại. Chuột đực khỏe mạnh được chia thành ba nhóm: đối chứng, nhịn ăn hoàn toàn 48 giờ (uống nước tự do) và cho ăn lại 4 giờ sau nhịn ăn 48 giờ. Mẫu vùng dưới đồi được thu nhận, tách chiết ARN tổng số, tổng hợp cDNA và phân tích bằng RT-qPCR. Khi chuẩn hóa bằng -actin, biểu hiện BDNF giảm có ý nghĩa thống kê ở nhóm nhịn ăn 48 giờ và không còn khác biệt sau cho ăn lại 4 giờ so với đối chứng. Trong khi chuẩn hóa bằng GAPDH, biểu hiện BDNF không thay đổi có ý nghĩa thống kê ở cả hai nhóm xử lý. Đối với BACE1, mức độ biểu hiện không thay đổi đáng kể giữa các nhóm và cho kết quả nhất quán khi chuẩn hóa bằng cả hai gen nội chuẩn. Kết quả cho thấy β-actin và GAPDH không hoàn toàn tương đương trong mô hình nhịn ăn - cho ăn lại, trong đó -actin có thể phù hợp hơn để đánh giá các gen nhạy cảm với trạng thái chuyển hóa tại vùng dưới đồi chuột.

    Tài liệu tham khảo

    Akyüz E. & Aslan F.Ş. (2025). Role of the Hippocampus in Cognition. In: The Human Hippocampus: Development, Neuroanatomy, Neurophysiology, Neuropathology and Surgery. Turgut, M., Acer, N., Turgut, A. T. & Di Rocco, C. (eds.). Springer Nature Switzerland Cham. pp. 205-214.

    Bombassaro B., Araujo E.P. & Velloso L.A. (2024). The hypothalamus as the central regulator of energy balance and its impact on current and future obesity treatments. Arch Endocrinol Metab. 68(Spec Issue): e240082.

    Brigadski T. & Leßmann V. (2020). The physiology of regulated BDNF release. Cell and Tissue Research. 382(1): 15-45.

    Bustin S.A., Ruijter J.M., van den Hoff M.J.B., Kubista M., Pfaffl M.W., Shipley G.L., Tran N., Rödiger S., Untergasser A., Mueller R., Nolan T., Milavec M., Burns M.J., Huggett J.F., Vandesompele J. & Wittwer C.T. (2025). MIQE 2.0: Revision of the Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments Guidelines. Clinical Chemistry. 71(6): 634-651.

    De Pietri Tonelli D., Mihailovich M., Di Cesare A., Codazzi F., Grohovaz F. & Zacchetti D. (2004). Translational regulation of BACE‐1 expression in neuronal and non‐neuronal cells. Nucleic Acids Research. 32(5): 1808-1817.

    Francelin C., Mitter S.K., Qian Q., Barodia S.K., Ip C., Qi X., Gu H., Quigley J., Goldberg M.S., Grant M.B. & Boulton M.E. (2021). BACE1 Inhibition Increases Susceptibility to Oxidative Stress by Promoting Mitochondrial Damage. Antioxidants. 10(10): 1539.

    Fukuchi M., Izumi H., Mori H., Kiyama M., Otsuka S., Maki S., Maehata Y., Tabuchi A. & Tsuda M. (2017). Visualizing changes in brain-derived neurotrophic factor (BDNF) expression using bioluminescence imaging in living mice. Sci Rep. 7(1): 4949.

    Harvey T. & Rios M. (2024). The Role of BDNF and TrkB in the Central Control of Energy and Glucose Balance: An Update. Biomolecules. 14(4): 424.

    Herman R., Trsan J., Lipar L., Jensterle M. & Janez A. (2025). Endocrine Adaptations to Prolonged Fasting: From Physiology, Clinical Uncertainties, Translational Challenges to Healthspan Implications. Nutrients. 17(24).

    Kambe Y., Yamauchi Y., Thanh Nguyen T., Thi Nguyen T., Ago Y., Shintani N., Hashimoto H., Yoshitake S., Yoshitake T., Kehr J., Kawamura N., Katsuura G., Kurihara T. & Miyata A. (2021). The pivotal role of pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide for lactate production and secretion in astrocytes during fear memory. Pharmacol Rep. 73(4): 1109-1121.

    Karimi R., Cleven A., Elbarbry F. & Hoang H. (2021). The Impact of Fasting on Major Metabolic Pathways of Macronutrients and Pharmacokinetics Steps of Drugs. European Journal of Drug Metabolism and Pharmacokinetics. 46(1): 25-39.

    Li X., Li X., Wu Z., Wang K., Qiao R., Han X., Li X., Yang F., Yu T., Wang T. & Bai J. (2025). Recent Advances in Nutritional Requirements and Metabolic Homeostasis Regulation of Animals Under Stress Conditions. 15(23): 3412

    Livak K.J. & Schmittgen T D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 25(4): 402-8.

    Miranda M., Morici J.F., Zanoni M.B. & Bekinschtein P. (2019). Brain-Derived Neurotrophic Factor: A Key Molecule for Memory in the Healthy and the Pathological Brain. Front Cell Neurosci. 13: 363.

    Numakawa T. & Kajihara R. (2025). The Role of Brain-Derived Neurotrophic Factor as an Essential Mediator in Neuronal Functions and the Therapeutic Potential of Its Mimetics for Neuroprotection in Neurologic and Psychiatric Disorders. Molecules. 30(4): 848.

    Paxinos G. & Watson C. (2014). The rat brain in stereotaxic coordinates. Elsevier, Academic Press. Amsterdam.

    Pedroso J.A.B., Wasinski F. & Donato J. (2020). Prolonged fasting induces long-lasting metabolic consequences in mice. The Journal of Nutritional Biochemistry. 84: 108457.

    Seidler N.W. (2013). GAPDH and Intermediary Metabolism. In: GAPDH: Biological Properties and Diversity. Seidler, N. W. (ed.). Springer Netherlands Dordrecht. pp. 37-59s.

    Taylor H.A., Przemylska L., Clavane E.M. & Meakin P.J. (2022). BACE1: More than just a β-secretase. Obes Rev. 23(7): e13430.

    Ummay Sumaya W., Begum R.A., Alam S., Jahan H., Al Mamun A. & Muid K.A. (2025). Insights into the Structural and Functional Properties of Actin Isoforms in Different Model Organisms. Biology Bulletin. 52(5): 193.

    Vandesompele J., De Preter K., Pattyn F., Poppe B., Van Roy N., De Paepe A. & Speleman F. (2002). Accurate normalization of real-time quantitative RT-PCR data by geometric averaging of multiple internal control genes. Genome Biol. 3(7): Research0034.

    Vassar R., Kovacs D.M., Yan R. & Wong P.C. (2009). The â-Secretase Enzyme BACE in Health and Alzheimer's Disease: Regulation, Cell Biology, Function, and Therapeutic Potential. The Journal of Neuroscience. 29(41): 12787-12794.

    Wagner E.M. (2013). Monitoring Gene Expression: Quantitative Real-Time RT-PCR. In: Lipoproteins and Cardiovascular Disease: Methods and Protocols. Freeman, L. A. (ed.). Humana Press Totowa, NJ: 19-45 pages.

    Wang L., Liu J., Wang Q., Jiang H., Zeng L., Li Z. & Liu R. (2019). MicroRNA-200a-3p Mediates Neuroprotection in Alzheimer-Related Deficits and Attenuates Amyloid-Beta Overproduction and Tau Hyperphosphorylation via Coregulating BACE1 and PRKACB. Front Pharmacol. 10: 806.

    Yan R. & Vassar R. (2014). Targeting the β secretase BACE1 for Alzheimer's disease therapy. The Lancet Neurology. 13(3): 319-329.

    Zhang X. & Song W. (2013). The role of APP and BACE1 trafficking in APP processing and amyloid-β generation. Alzheimer's Research & Therapy. 5(5): 46.