KHẢO SÁT HÀM LƯỢNG POLYPHENOL, HOẠT TÍNH CHỐNG OXY HÓA VÀ KHÁNG KHUẨN TRÊN VI KHUẨN Escherichia coliATCC 25922 CỦA MỘT SỐ LOÀI THẢO DƯỢC

Ngày nhận bài: 30-06-2021

Ngày duyệt đăng: 29-10-2021

DOI:

Lượt xem

2

Download

2

Số: Tập 19 Số 12 (2021)

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Hà, N., Thủy, L., Thanh, N., Hằng, N., Cường, Đào, Cường, N., … Thanh Hải N. (2024). KHẢO SÁT HÀM LƯỢNG POLYPHENOL, HOẠT TÍNH CHỐNG OXY HÓA VÀ KHÁNG KHUẨN TRÊN VI KHUẨN Escherichia coliATCC 25922 CỦA MỘT SỐ LOÀI THẢO DƯỢC. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 19(12), 1628–1639. https://vie.vjas.vn/index.php/vjasvn/article/view/920

KHẢO SÁT HÀM LƯỢNG POLYPHENOL, HOẠT TÍNH CHỐNG OXY HÓA VÀ KHÁNG KHUẨN TRÊN VI KHUẨN Escherichia coliATCC 25922 CỦA MỘT SỐ LOÀI THẢO DƯỢC

Nguyễn Thị Thanh Hà 1 , Lê Phương Hồng Thủy 1 , Nguyễn Văn Thanh 1 , Nguyễn Thị Thu Hằng 1 , Đào Văn Cường 2 , Nguyễn Văn Cường 3 , Nguyễn Huy Thái 3 , Nguyễn Thanh Hải 4, 1, 5

  • 1 Khoa Thú y, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
  • 2 Cục Chế biến và Phát triển Thị trường Nông sản, Bộ Nông nghiệp và Phát triển Nông thôn
  • 3 Trung tâm Nghiên cứu Chó nghiệp vụ PDS, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
  • 4 Viện Sinh học Nông nghiệp, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
  • 5 Khoa Công nghệ Sinh học, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    Hoạttính kháng khuẩn, hàm lượng polyphenol, hoạt tính chống oxyhóa, dịch chiết, Escherichia coli

    Tóm tắt


    Nghiên cứu được thực hiện nhằm xác định hàm lượng polyphenol tổng số, hoạt tính chống oxyhóa và kháng khuẩn của dịch chiết từ các loài thảo dược gồm cúc hoa vàng (Chrysanthemum indicum), hoàng kỳ (Astragalus membranaceusBge), kim ngân (Lonicera japonicaThumb), xuyên tâm liên (Andrographis paniculata), lô hội (Aloe vera), cam thảo (Glycyrrhiza uralensis Fisch), cỏ hương bài (Vetiveria zizanioidesL. Nash), tô mộc (Caesalpinia sappan), hoàng liên (Coptis chinensisFranch.)và sài đất (Wedelia chinensisOsb. Merr).Dược liệu được chiết xuất với các dung môi gồm ethanol, methanol và nướcnóng, sau đó hòa loãng trong dung dịch Dimethyl Sulfoxide để xác định hoạt tính kháng khuẩn,hàm lượng polyphenoltổng sốvà khả năng chống oxy hóa. Kết quả cho thấy tô mộc, cúc hoa vàng và sài đất có tác dụng ức chế sự phát triển của vi khuẩn E. coliATCC25922 tốt nhất(với đường kính vòng vô khuẩn của dịch chiết ethanol nồng độ 1.000 mg/ml tương ứng là 25,15 ± 0,45; 23,25 ± 0,35 và 22,35 ± 0,65mm). Đồng thời, đây cũng là các dược liệucóchứa hàm lượng polyphenol tổng số và hoạt tính chống oxi hóa cao nhất. Cụ thể, hàm lượng polyphenol của dịch chiết tô mộc, cúc hoa vàng và sài đất sử dụng dung môi ethanol tương ứng là 5,817± 0,055; 5,034 ± 0,046 và 4,625 ± 0,069mg axit chlorogenic/100mg dược liệu; trong khi hoạt tính chống oxyhóa tương ứng là 0,512 ± 0,012; 0,424 ± 0,006 và 0,312 ± 0,009mg Vitamin E/100mg dược liệu.

    Tài liệu tham khảo

    Alice G. (2016). Recent contributions to development of herbal-based immunomodulators for frms animals. Journal of Immunology and Serum Biology.2: 1-10.

    Babak D., Ali M., Farzad M.A., Eleni K. & Samuel N. (2017). Effect of Aloe veraand vitamin E supplementation on the immune response of broilers. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias. 30(2): 159-164.

    Badami S., Moorkoth S. & Suresh B. (2004). Caesalpinia sappan: A medicinal and dye yielding plant. Natural Product Radiance. 3(2): 75-82.

    Badami S., Moorkoth S., Rai S.R., Kannan E. & Bhojrai S. (2003) Antioxidant activity of Caesalpinia sappan heartwood. Biol Pharm Bull 26: 1534-1537.

    Balaji P., Venkatachalam V., Sivakkumar T. & Kannan K. (2016). Activation of complement system, alternate pathway activity of selected herbal drugs. Mintage journal of pharmaceutical and medical sciences. 5(3): 10-15.

    Bassam A.S., Ghaleb A., Naser J., Awni A.H. & Kamel A. (2006). Antibacterial activity of four plant extracts used in palestine in folkloric medicine against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Turkish Journal Of Biology. 30:195-198.

    Clinical Laboratory Standards Institute (2010). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing twentieth informational supplement M100-S20. 30(1).

    Cowan M.M. (1999). Plant products as antimicrobial agents. Clinical Microbiology Reviews. 12: 564-82.

    Darah I., Lim S.H. & Nithianantham K. (2013). Effects of methanol extract of Wedelia chinensis Osbeck (Asteraceae) leaves against pathogenic bacteria with emphasise on Bacillus cereus. Indian J Pharm Sci. 75(5): 533-539.

    Das M.P., Rebecca L.J. & Sharmila S. (2013). Evaluation of antibacterial and antifungal efficacy of Wedelia chinensisleaf extracts. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research. 5(2): 265-269.

    Do Q.D., Angkawijaya A.E, Tran N.P.L, Huynh L.H, Soetaredjo F.E., Ismadji S. & Ju Y.H. (2014). Effect of extraction solvent on total phenol content, total flavonoid content, and antioxidant activity of Limnophila aromatic. Journal of Food and Drug Analysis 22: 296-302.

    Đỗ Tất Lợi (1999). Những cây thuốc và vị thuốc Việt Nam. Nhà xuất bản Y học, Hà Nội.

    Heidari S.M., Tabatabaei Y.F., Alizadeh B.B. & Mortazavi A. (2015). Antimicrobial effect of aqueous, ethanol, methanol and glycerin extracts of Satureja bachtiarica on Streptococcus pyogenes, PseudomonasaeruginosaandStaphylococcusepidermidis. Zahedan journal of research in medical sciences. 17(7): 1-5.

    Hong F., Xiao W., Ragupathi G., Lau C.B., Leung P.C., Yeung K. S., George C., Cassileth B., Kennelly E. & Livingston P. O. (2010). The known immunologically active components of astragalus account for only a small proportion of the immunological adjuvant activity when combined with conjugate vaccines. Planta Medica. 77(8): 817-824.

    Kim E., Ahn S., Rhee H.I. & Lee D.C. (2016). Coptis chinensis Franchextract up-regulate type I helper T-cell cytokine through MAPK activation in MOLT-4 T cell. Journal of Ethnopharmacoloy. 189: 126-131.

    Lee J.H., Cho S., Paik H.D., Choi S.W., Nam K.T., Hwang S.G. & Kim S.K. (2014). Investigation on antibacterial and antioxidant activities, phenolic and flavonoid contents of some Thai edible plants as an alternative for antibiotics. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. 10: 1461-8.

    Linda S., Kim, Robert F. Waters N.D., Peter M. & Burkholder M.D. (2002). Immunological Activity of Larch Arabinogalactanand Echinacea: A preliminary, randomized, double‐blind, placebo‐controlled trial. Alternative Medicine Review. 7(2): 138‐149.

    Masuda T., Oyama Y., Inaba Y., Toi Y., Arata T., Takeda Y., Nakamoto K., Kuninaga H., Nishizato S. &Nonaka A. (2002). Antioxidant related activities of ethanol extracts from edible and medicinal plants cultivated in Okinawa, Japan. Nippon Shokuhin Kagaku Kogaku Kaishi.49(10): 652-661.

    Nguyen V.B., Vu B.D., Pham G.K., Le B.Q., Nguyen V.C., Men C.V. & Nguyen T.V. (2020). Phenolic Compounds from Caesalpinia sappan. Pharmacognosy Journal. 12(2):1-5.

    PengH.Y., Lai C.C., Lin C.C. & Chou S.T. (2014). Effect of vetiveria zizanioides essential oil on melanogenesis in melanoma cells: downregulation of tyrosinase expression and suppression of oxidative stress. Scientific World Journal. Hindawi Publishing Corporation. Article ID 213013, 9p.

    Pitinidhipat & Patchanee Y. (2012). Antibacterial Activity of Chrysanthemum indicum, Centella asiaticaand Andrographis paniculataagainst Bacillus cereusand Listeriamonocytogenesunder Osmotic Stress. Nateepat. AU journal of Technology. 15(4): 239-245.

    Rehana B.H. & Nagarajan N. (2018). Evaluation of in vitroantioxidant activity of a medicinal herb, Wedelia chinensis(Osbeck) Merrill. Asian Journal of Pharmaceutical and Clinical Research. 11(10): 433-437.

    Sandigawad A.M. (2015). Traditional applications and phytochemical investigations of Lonicera japonicaThunb. International Journal of Drug Development and Research. 7: 42-49.

    Sen A. & Batra A. (2012). Evaluation of antimicrobial activity of different solvent extracts of medicinal plant: Melia AzedarachL. International Journal of Current Pharmaceutical Research.4: 67-73.

    Srinivasan R., Govindarasu G.S., Sakthivel K., Krishnamurthy M., Ramaiya B., Mariappan K., Muchukathan G. & Chinnavenkataraman G. (2012). In vitroantimicrobial activity of Caesalpinia sappanL. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine.2(1):136-139.

    Suda I., Oki T., Nishiba Y., Masuda M.,Kobayashi M., Nagai S., Hiyane R.& Miyashige T. (2005). Polyphenol contents and radical scavenging activity of extracts from fruits and vegetables cultivated in Okinawa, Japan. Nippon Shokuhin Kgaku Kogaku Kaishi.52(10): 462-471.

    Thanh Van Nguyen & Hai Thanh Nguyen (2019). Study on antibacterial effects of several Vietnamese medicine plants and their relationships with polyphenol contents.Asian Journal of Pharmaceutical and Clinical Research. 12(4): 257-265.

    Yadav R., Yadav N. & Kharya M.D. (2016). Immunomodulation potential of Andrographis Paniculataand Tinospora Cordifoliamethanolic extracts in combination forms. International Journal of Pharmacological Research. 6(1): 29-40.

    Zhao J.F., Kiyohara H., Sun X.B., Matsumoto T., Cyong J.C., Yamada H., Takemoto N. &Kawamura H. (1991). In vitro immunostimulating polysaccharide fractions from roots of Glycyrrhiza uralensis fish. et DC.Phytotherapy Research.5(5): 206-210.

    ZhengJ., Yu X., Maninder M. & Xu B. (2018). Total phenolics and antioxidants profiles of commonly consumed edible flowers in China. International journal of food properties. 21(1): 1524-1540.

    Zhu S., Yang Y., Yu H., Ying Y. & Zou G.(2005). Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oils of Chrysanthemum indicum. Journal of Ethnopharmacology. 96(1-2): 151-158.