Date Received: 26-07-2025
Date Published: 06-08-2025
##submissions.doi##: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2017.15.3.
Views
Downloads
How to Cite:
Biểu hiện của lysozyme gen liên quan đến miễn dịch sau khi sử dụng chất kích thích miễn dịch trong tôm he Nhật Bản
Keywords
Biểu hiện gen, chất kích thích miễn dịch, định lượng real-time PCR, tôm Kurumalysozyme
Abstract
Chất kích thích miễn dịch là chất giúp tăng cường hoạt động của hàng rào miễn dịch và cung cấp sức đề kháng với bệnh. Ex400 được sản xuất từ vi tảo và Euglena là chất kích thích miễn dịch trên tôm được sử dụng để xác định biểu hiện gen của lysozyme trong tôm he Nhật Bản. ARN tổng số được chiết xuất từ các cơ quan lympho, ruột và máu của tôm tại các thời điểm 0, 3, 7 và 10 ngày sau khi cho tôm ăn Ex400. Trong ruột và cơ quan lympho của tôm, biểu hiện gen của lysozyme cao hơn so với lô đối chứng tại các thời điểm 7 và 10 ngày sau khi cho tôm ăn Ex400 (P< 0,01). Biểu hiện lysozyme trong máu của tôm cũng được xác định ở mức độ cao hơn so với lô đối chứng tại thời điểm 3 và 10 ngày sau khi cho ăn Ex400 (P < 0,01). Kết quả mức độ biểu hiện gen của lysozyme cho thấy chất kích thích miễn dịch có thể kích hoạt lysozyme trong hệ thống miễn dịch của tôm he Nhật Bản..
References
Boonyaratpalin, S., Boonyaratpalin, M., Supamattaya, K., and Toride, Y. (1995). Effects of peptidoglycan (PG) on growth, survival, immune response, and tolerance to stress in black tiger shrimp, Penaeus monodon. Diseases in Asian Aquaculture II. Fish Health Section. Manila, Philippines: Asian Fisheries Society, 469 - 477.
Burge, E. J., Madigan, D. J., Burnett, L. E., & Burnett, K. G. (2007). Lysozyme gene expression by hemocytes of Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei, after injection with Vibrio. Fish & shellfish immunology, 22(4): 327-339.
Burgents, J. E., Burnett, L. E., Stabb, E. V., and Burnett, K. G. (2005). Localization and bacteriostasis of Vibrio introduced into the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Developmental and Comparative Immunology, 29(8): 681 - 691.
Cerezuela, R., Guardiola, F. A., Meseguer, J., and Esteban, M. A. (2012). Enrichment of gilthead seabream (Sparus aurata L.) diet with microalgae: effects on the immune system. Fish physiology and biochemistry, 38(6): 1729-1739.
Deng, D., Mei, C., Mai, K., Tan, B. P., Ai, Q., and Ma, H. (2013). Effects of a yeast‐based additive on growth and immune responses of white shrimp, Litopenaeus vannamei (Boone, 1931), and aquaculture environment. Aquaculture Research, 44(9): 1348 - 1357.
Jayabalan, N., Chandran, R., Sivakumar, V., and Ramamoorthi, K. (1982). Occurrence of luminescent bacteria in sediments: current science assn cv raman avenue, po box 8005, bangalore 560 080, India, 51: 710 - 711.
Johnson, P. T. (1987). A review of fixed phagocytic and pinocytotic cells of decapod crustaceans, with remarks on hemocytes. Developmental and Comparative Immunology, 11(4): 679 - 704.
Jollès, P., and Jollès, J. (1984). What's new in lysozyme research? Molecular and cellular biochemistry, 63(2): 165 - 189.
Kono, T., Fall, J., Korenaga, H., Takayama, H., Iizasa, T., Mekata, T., . . . Sakai, M. (2010). Immunomodulation by DNA vaccination against white spot syndrome virus (WSSV). Asian Fisheries Science, 23(4): 435 - 446.
Liuxy, P. C., Lee, K. K., & Chen, S. N. (1996). Pathogenicity of different isolates of Vibrio harveyi in tiger prawn, Penaeus monodon. Letters in Applied Microbiology, 22(6): 413 - 416.
Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method. methods, 25(4): 402 - 408.
Maeda, M., Shibata, A., Biswas, G., Korenaga, H., Kono, T., Itami, T., & Sakai, M. (2014). Isolation of lactic acid bacteria from kuruma shrimp (Marsupenaeus japonicus) intestine and assessment of immunomodulatory role of a selected strain as probiotic. Marine biotechnology, 16(2): 181 - 192.
Mekata, T., Kono, T., Yoshida, T., Sakai, M., & Itami, T. (2008). Identification of cDNA encoding Toll receptor, MjToll gene from kuruma shrimp, Marsupenaeus japonicus. Fish and shellfish immunology, 24(1): 122 - 133.
Oka, M. (1969). Studies on Penaeus orientalis Kishinouye-VIII. Structure of the newly found lymphoid organ. Bull Jpn Soc Sci Fish, 35: 245 - 250.
Raa, J. (1996). The use of immunostimulatory substances in fish and shellfish farming. Reviews in Fisheries Science, 4(3): 229 - 288.
Ringø, E. (1993). Does dietary linoleic acid affect intestinal microflora in Arctic charr, Salvelinus alpinus (L.)? Aquaculture Research, 24(1): 133 - 135.
Sordillo, L., Shafer-Weaver, K., and DeRosa, D. (1997). Immunobiology of the mammary gland. Journal of dairy science, 80(8): 1851 - 1865.
Tanekhy, M., and Fall, J. (2015). Expression of innate immunity genes in kuruma shrimp Marsupenaeus japonicus after in vivo stimulation with garlic extract (allicin). Veterinarni Medicina, 60(1): 39 - 47.
Tyagi, A., Khushiramani, R., Karunasagar, I., and Karunasagar, I. (2007). Antivibrio activity of recombinant lysozyme expressed from black
tiger shrimp, Penaeus monodon. Aquaculture,
(1): 246 - 253.
Van de Braak, C., Botterblom, M., Taverne, N. v., Van Muiswinkel, W., Rombout, J., and Van der Knaap, W. (2002). The roles of haemocytes and the lymphoid organ in the clearance of injected Vibrio bacteria in Penaeus monodon shrimp. Fish & shellfish immunology, 13(4): 293 - 309.