Date Received: 01-03-2017
Date Accepted: 09-05-2017
Date Published: 06-08-2025
##submissions.doi##: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2017.15.9.
Views
Downloads
How to Cite:
Phản ứng của cây ngải cứu (Artemisia vulgaris L.) với các tần suất tưới khác nhau tại Gia Lâm, Hà Nội
,
Nguyen Thi Thanh Hai
,
Bui The Khuynh
Keywords
Artemisia vulgaris L., hạn, ngải cứu
Abstract
Thí nghiệm được tiến hành trong nhà lưới có mái che tại Học viện Nông nghiệp Việt Nam nhằm đánh phản ứng của cây ngải cứu với các khoảng cách tưới khác nhau thông qua một số chỉ tiêu nông học, sinh lý. Công thức xử lý hạn thông qua khoảng cách giữa các lần tưới hạn T1 (1 tuần/lần), T2 (2 tuần/lần), T3 (3 tuần/lần). Kết quả cho thấy tăng dần khoảng cách giữa các lần tưới đã làm giảm chiều cao cây, số nhánh, diện tích lá và khả năng tích lũy chất khô. Trong điều kiện thiếu nước kéo dài, bộ rễ cây ngải cứu có xu hướng tăng số lượng rễ cấp 1, tăng chiều dài và chiều rộng bộ rễ cũng như tăng hàm lượng diệp lục b. Trong điều kiện thiếu hụt nước đã làm giảm số lượng bó mạch rễ của cây ngải cứu. Khả năng chịu hạn của các mẫu giống tham gia thí nghiệm được xếp theo thứ tự G6 > G1 > G7.
References
Aldesuquy HS, Abo-Hamed SA, Abbas MA, and Elhakem AH (2013). Effect of glycine betaine and salicylic acid on growth and productivity of drought wheat accessions: Image analysis for measuring the anatomical features in flag leaf and peduncle of the main shoot. Journal of Stress Physiology and Biochemistry, 9(2): 35-63.
Anjum SA, Xie XY, Wang L, Saleem MF, Man C, and Lei W (2011). Morphological and physiological responses of plants to drought stress. African Journal of Agricultural Research, 6(9): 35-63.
Anon (2008). World Health Organization. www. who. int/mediacentre/factsheet/fs134/en.
Arnon DI (1949). Cooper enzymes in isolated chloroplasts, polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24(1): 1-15.
Ashraf MY, Azmi AR, Khan AH, and Ala SA (1994). Effect of water stress on total phenols, peroxidase activity and chlorophyll content in wheat (Triticum aestivum L.) genotypes under soil water deficits. Acta Physiol. Plant, 16: 185-191
Ashraf M and Floolad MR (2007). Improving plant abiotic stress resistance by exogenous application of osmoprotectants glycinebetaine and proline. Env. Exp. Bot., 59: 206-216.
Athar H and Ashraf M (2005). Photosynthesis under drought stress. In: Handbook of photosynthesis, 2nd (ed.) by M. Pessarakli. C RC. Press, New York, USA., pp. 795-810.
Anjum SA, Xie X, and Wang L (2011). Morphological, physiological and biochemical responses of plants to drought stress. Afr. J. Agr. Res., 6: 2026-2032.
Din J, Khan SU, Ali I, and Gurmani AR (2011). Physiological and agronomic response of canola varieties to drought stress. J. Anim. Plant Sci., 21:78-82.
Djibril S, Mohamed OK., Diaga D, Dieesgane D, Abaye BF, Maurice S, and Alain B (2005). Growth and development of date palm (Phoenix dactylifera L.) seedling under drought and salinity stresses. Africa J. Biotechnol., 4: 968-972.
Farooq MA, Wahid N, Kobayashi D, Fujita, and Basra SMA. (2009). Plant drought stress: effects, mechanisms and management. Agron. Sustain. Dev., 29:185-212.
Franco JA. (2011). Root development under drought stress. Technology and knowledge e-Bulletin. Technical University of Cartagena, 2(6): 1-3.
Highshoe AL. (1987). Native trees shrubs, and vines for urban and rural America: A planting design manual for environmental designers. New York, Van Nostrand Reinhold.
Jud₫entienë A and Buzelytë J (2006). Chemical composition of essential oils of Artemisia vulgaris L. (mugwort) from North Lithuania, CHEMIJA, 17(1): 12-15.
Kadiođlu, Terzi AR, Saruhan N, and Sahlam N (2012). Current advances in the investigation of leaf rolling caused by biotic and abiotic stress factors. Plant Sci., 182: 42-48.
Kiani SP, Paury P, Sarrafi A, and Grieu P (2008). QTL analysis of chlorophyll fluorescence parameters in sunflower (Helianthus annuus L.) under well-watered and water-stressed conditions. Plant Science, 175: 565-573.
Lee SJ (1998). Estrogenic flavonoids from Artemisia vulgaris L. J. Agric. Food Chem., 46: 3325-3329.
Massacci A, Nabiev SM, Pietrosanti L, Nematov SK, Chernikova TN, Thor K, and Leipner J (2008). Response of the photosynthetic apparatus of cotton (Gossypium hirsutum) to the onset of drought stress under field conditions studied by gas-exchange analysis and chlorophyll fluorescence imaging. Plant Physiology and Chemistry, 46: 189-195.
McElroy JS and Kopsell (2009). Physiological role of carotenoids and other antioxidants in plants and application to turf grass stress management. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 37(4): 327-333
Ninh Thi Phip, Nguyen Thi Thanh Hai, and Dinh Thai Hoang (2015). Evaluation of Growth, Yield and Pharmaceutical Quality of Some Mugwort (Artemisia vulgaris L.) Accessions in Gia Lam, Ha Noi. Vietnam Journal of Agriculture Science, 13(4): 526-533.
Terzi R and Kadưođlu A (2006). Drought stress tolerance and the antioxidant enzyme systems in Ctenanthe setosa. ACTA BIOLOGICA CRACOVIENSIA Series Botanica, 48(2): 89-96.
Umano K, Hagi Y, Nakahara K, Shoji A, and Shibamoto T (2000). Volatile chemicals identified in extracts from leaves of Japanese mugwort (Artemisia princeps pamp.). J. Agric. Food Chem., 48(8): 3463-3469.
Uzun E, Sariyar G, Adsersen A, Karakoc B, Otük G, Oktayoglu E, and Pirildar S (2004). Traditional medicine in Sakarya province (Turkey) and antimicrobial activities of selected specie. J. Ethnopharmacol., 95(2-3): 287-296.
Wu Y and Cosgrove DJ (2000). Adaptation of roots to low water potentials by changes in cell wall extensibility and cell wall proteins. J. Exp. Bot., 51(350): 1543-1553
Wu QS, Xia XR, and Zou YN (2008). Improved soil structure and citrus growth after inoculation with three arbuscular mycorrhizal fungi under drought stress. Eur. J. Soil Biol., 44: 122-128.