ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG PHÒNG CHỐNG BỆNH TUYẾN TRÙNG NỐT SƯNG HẠI CÀ CHUA (Meloidogyne incognita) BẰNG NẤM ĐỐI KHÁNG Trichoderma asperellum

Ngày nhận bài: 08-02-2025

Ngày xuất bản: 21-02-2025

DOI: https://doi.org/10.1234/1gph0n30

Lượt xem

9

Download

4

Số: Tập 22 Số 12 (2024)

Chuyên mục:

NÔNG HỌC

Cách trích dẫn:

Hồng, N., & Huy, N. (2025). ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG PHÒNG CHỐNG BỆNH TUYẾN TRÙNG NỐT SƯNG HẠI CÀ CHUA (Meloidogyne incognita) BẰNG NẤM ĐỐI KHÁNG Trichoderma asperellum. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 22(12). https://doi.org/10.1234/1gph0n30

ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG PHÒNG CHỐNG BỆNH TUYẾN TRÙNG NỐT SƯNG HẠI CÀ CHUA (Meloidogyne incognita) BẰNG NẤM ĐỐI KHÁNG Trichoderma asperellum

Nguyễn Thị Thanh Hồng (*) 1 , Nguyễn Đức Huy 1

  • Tác giả liên hệ: ntthong@vnua.edu.vn
  • 1 Khoa Nông học, Học viện Nông nghiệp Việt nam

    • Từ khóa

    Meloidogyne incognita, nấm đối kháng, phòng trừ, Trichoderma asperellum, tuyến trùng nốt sưng

    Tóm tắt


    Tuyến trùng nốt sưng Meloidogyne incognita là loài dịch hại phổ biến trên cây cà chua. Nghiên cứu này nhằm đánh giá khả năng phòng trừ bệnh tuyến trùng nốt sưng (M. incognita) của nấm Trichoderma asperellum trong phòng thí nghiệm và chậu vại. Thí nghiệm thiết kế với 5 công thức trong đó 4 công thức với nồng độ dịch bào tử nấm T. asperellum là 104, 105, 106 và 107 bào tử/ml và công thức đối chứng (0 bào tử/ml). Kết quả cho thấy nồng độ
    107 bào tử/ml có hiệu quả tốt nhất, giảm tỷ lệ nở của trứng tuyến trùng (113 trứng/152 trứng tương đương 25,65%) so với đối chứng ngay sau 24h xử lý. Ở nồng độ này, nấm T. asperellum cũng giết chết ấu trùng tuổi 2 M. incognita với tỷ lệ chết sau 72h đạt 88%. Nồng độ dịch bào tử 107/ml của nấm T. asperellum cũng có hiệu quả làm tăng chiều cao (55,7cm) và trọng lượng (46g) cây cà chua so với đối chứng là 48,27cm và 36,43g. Nồng độ này cũng làm giảm số u sưng/rễ (118,67) và số trứng/túi trứng (154) so với đối chứng lần lượt là 218,33 và 241,67 - một số chỉ tiêu liên quan đến khả năng nhân lên của tuyến trùng M. incognita. Kết quả nghiên cứu này cung cấp thêm thông tin về phòng chống bệnh tuyến trùng nốt sưng cây cà chua bằng nấm đối kháng T. asperellum.

    Tài liệu tham khảo

    Annapurna M., Bhagawati B. & Kurulkar U. (2018). Biochemical mechanism of native fungal bioagents in the management of root-knot nematode Meloidogyne incognita on tomato. International Journal of Current Microbiology and Applied Science. 7(11): 380-395.

    Bhuiyan S., Garlick K., Anderson J., Wickramasinghe P. & Stirling G.. (2018). Biological control of root-knot nematode on sugarcane in soil naturally or artificially infested with Pasteuria penetrans. Australas Plant Pathology. 47(1): 45-52.

    Błaszczyk L., Popiel D., Chełkowski J., Koczyk G., Samuels G.J., Sobieralski K. & Siwulski. (2011). Species diversity of Trichoderma in Poland. J. Appl. Genet. 52: 233-243.

    Brotman Y. Landau U., Inostroza Á.C., Takayuki T., Fernie A.R., Chet I., Viterbo A. & Willmitzer L. (2013). Trichoderma-plant root colonization: escaping early plant defense responses and activation of the antioxidant machinery for saline stress tolerance. PLoS Pathogens. 9(3).

    Bunbury-Blanchette A.L. & Walker A.K. (2019). Trichoderma species show biocontrol potential in dual culture and greenhouse bioassays against Fusarium basal rot of onion. Biological Control. 130: 127-35.

    d’Errico G., Marra R., Crescenzi A., Davino S.W., Fanigliulo A., Woo S.L. & Lorito M. (2019). Integrated management strategies of Meloidogyne incognita and Pseudopyrenochaeta lycopersici on tomato using a Bacillus firmus-based product and two synthetic nematicides in two consecutive crop cycles in greenhouse. Crop Protection.122: 159-64.

    Feyisa B. (2022). A Review on Root Knot Nematodes (RKNs): Impact and Methods for Control. J Plant Pathol Microbiol. 12(3): 547.

    Feyisa B., Lencho A., Selvaraj T. & Getaneh G. (2016). Evaluation of some botanicals and Trichoderma harzianum against root-knot nematode (Meloidogyne incognita (Kofoid and White) Chit wood) in tomato. Journal of Entomology and Nematology. 8: 11-18.

    Forghani F. & Hajihassani A. (2020). Recent advances in the development of environmentally benign treatments to control root-knot nematodes. Frontiers in Plant Science. Frontiers in Plant Science. 11

    Haiyan F., Meiling Y., Haiming W., Di Z., Xiaofeng Z., Yuanyuan W., Xiaoyu L., Yuxi D. & Lijie C.. (2020) Isolation and effect of Trichoderma citrinoviride Snef1910 for the biological control of root-knot nematode, Meloidogyne incognita. BMC Microbiology. 20: 299

    Hemeda N.F. & Deeb M.A. (2019). Evaluation of biological control potential for diferent Trichoderma strains against root-knot nematode Meloidogyne javanica. Journal of Advanced Laboratory Research in Biology 10: 16-22.

    Hermosa R., Viterbo A., Chet I. & Monte E. (2012). Plant-beneficial effects of Trichoderma and of its genes. Microbiology. 158: 17-25.

    Hoyos-Carvajal L., Orduz S. & Bissett J. (2009). Genetic and metabolic biodiversity of Trichoderma from Colombia and adjacent neotropic regions. Fungal Genetics and Biology. 46: 615-631.

    Khan A., Williams K.L. & Nevalainen H.K.M. (2004). Effects of Pacecilimyces lilacinus protease and chitinase on the eggshell structures and hatching of Meloidogyne javanica juveniles. Bio Control.

    : 346-35.

    Khan R. A., Najeeb S., Mao Z., Ling J., Yang Y., Li Y. & Xie B. (2020). Bioactive Secondary Metabolites from Trichoderma spp. against Phytopathogenic Bacteria and Root-Knot Nematode. Microorganisms. 8(3):401.

    Kubicek C. P., Komon-Zelazowska M. & Druzhinina I.S. (2008). Fungal genus Hypocera/Trichoderma: From barcodes to biodiversity. Journal of Zhejiang University-Science B. Doi.org/10.1631/ jzus.B0860015

    Marraschi R., Ferreira A., da Silva Bueno R. N., Leite J., Lucon C. & Harakava R. (2019). A protocol for selection of Trichoderma spp. to protect grapevine pruning wounds against Lasiodiplodia theobromae. Brazilian Journal of Microbiology. 50: 213-221.

    Mesa-Valle C.M., Garrido-Cardenas J.A. , Cebrian-Carmona J., Talavera M. & Manzano-Agugliaro F. (2020). Global Research on Plant Nematodes. Agronomy. 10(8)

    Morton C.O., Hirsch P.R. & Kerry B. (2004). Infection of plant-parasitic nematodes by nematophagous fungi - a review of application of molecular biology to understand infection processes and to improve biological control. Nematology. 6: 161-170.

    Mukhtar T. (2018) Management of root-knot nematode, Meloidogyne incognita, in tomato with two Trichoderma species. Pakistan Journal of Zoology. 50(4):1589-92.

    Naserinasab F., Sahebani N. & Etebarian, H.R. (2012). Biological control of Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum BI and salicylic acid on Tomato. African Journal of Food Science and Technology.5(3): 276-280.

    Nivien A.N., Raoof S., Aida M.E., Yasser S.M., Saad A., Radwa G.M., Mohamed H. & Elhagag A.H. (2022). Effective and Promising Strategy in Management of Tomato Root-Knot Nematodes by Trichoderma harzianum and Arbuscular Mycorrhizae. Agronomy. 12(2): 315

    Oka Y., Koltai H., Bar-Eyal M., Mor M., Sharon E., Chet I. & Spiegel Y. (2000). New strategies for the control of plant-parasitic nematodes. Pest management science. 56(11): 983-988.

    Poveda J., Abril-Urias P. & Escobar C. (2020). Biological control of plant-parasitic nematodes by filamentous fungi inducers of resistance: Trichoderma, mycorrhizal and endophytic fungi. Frontiers in Microbiology. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00992 (2020).

    Rusinque L., Nóbrega F., Cordeiro L., Lima A., Andrade S. & Inácio M.L. (2022). Root-Knot Nematode species associated with horticultural crops in the island of Azores, Portugal. Horticulturae. 8: 101.

    Sadf-Zouaoui N., Hannachi I., Rouaissi M., Hajlaoui M., Rubio M.B., Monte E., Boudabous A. & Hermosa M.R. (2009). Biodiversity of Trichoderma strains in Tunisia. Canadian Journal of Microbiology. 55: 154-162.

    Sarwar A., Latif Z., Zhang S., Zhu J., Zechel D &, Bechthold A. (2018). Biological control of potato common scab with rare isatropolone C compound produced by plant growth promoting Streptomyces A1RT. Frontiers in Microbiology. 9: 1126.

    Sharon E., Chet I., Viterbo A., Bar-Eyal M., Nagan H., Samuels G. J. & Spiegel Y. ( 2007). Parasitism of Trichoderma on Meloidogyne javanica and role of the gelatinous matrix. European Journal of Plant Pathology.118: 247-258.

    Sharon E., Chet I., Viterbo A., Bar-Eyal M., Nagan H., Samuels G.J. & Spiegel Y. (2007). Parasitism of Trichoderma on Meloidogyne javanica and role of the gelatinous matrix. European Journal of Plant Pathology. 118:247-258.

    Shoresh M., Harman G.E. & Mastouri F. (2010). Induced systemic resistance and plant responses to fungal biocontrol agents. Annual Review of Phytopathology. 48: 21-43.

    Soledad V.L &Miguel T. (2019). Root-knot nematodes on zucchini (Cucurbita pepo subsp.

    pepo): Pathogenicity and management. Crop Protection. 126.

    Sudeep S., Bihani T. & Jiban S. (2020). Root-knot nematode (Meloidogyne incognita) and its management: a review. Journal of Agriculture and Natural Resources. 3(2): 21-31.

    Zasada I.A., Masler E.P., Roges S.T. & Halbrendt J.M. (2009). Behavioural response of Meloidogyne incognita to benzyl isothiocyanate. Nematology. 11(4): 603-610.