Quy trình nhân giống in vitro cây đậu cô ve (Phaseolus vulgaris L.)

Ngày nhận bài: 07-06-2025

Ngày xuất bản: 13-06-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2013.11.6.

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 11 Số 6 (2013)

Chuyên mục:

NÔNG HỌC

Cách trích dẫn:

Thảo, N., Thảo, N., Hassan, F. ., & Jacobsen, H. . (2025). Quy trình nhân giống in vitro cây đậu cô ve (Phaseolus vulgaris L.). Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 11(6). https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2013.11.6.

Quy trình nhân giống in vitro cây đậu cô ve (Phaseolus vulgaris L.)

Ninh Thị Thảo (*) 1, 2 , Nguyễn Thị Phương Thảo 1, 2 , Fathi Hassan 1, 2 , Hans Jörg Jacobsen 1, 2

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Faculty of Biotechnology, Hanoi University of Agriculture
  • 2 Faculty of Natural Sciences, University of Hannover

    • Từ khóa

    BAP, in vitro regeneration, Phaseolus vulgaris L., α-NAA

    Tóm tắt


    Nghiên cứu được tiến hành nhằm xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây đậu cô ve (Phaseolus vulgaris L.). Đốt lá mầm từ cây con in vitro 7 ngày tuổi được sử dụng làm vật liệu nuôi cấy khởi đầu. Môi trường thích hợp cho tái sinh chồi từ đốt lá mầm là môi trường khoáng MS và vitamin B5 (MSB5) bổ sung 11,1µM BAP and 0,5µM α-NAA cho tỷ lệ mẫu tái sinh chồi đạt 86,7% với hệ số nhân chồi đạt 3,0 chồi/mẫu cấy sau 4 tuần nuôi cấy. Chồi sinh trưởng phát triển tốt, có từ 3-6 lá được chuyển sang môi trường ra rễ MSB5 chứa 4.9µM IBA, tỷ lệ chồi ra rễ đạt 53,3%, số rễ trung bình đạt 3,5 rễ/chồi sau 4 tuần. Tỷ lệ cây sống khi chuyển ra thích nghi ngoài vườn ươm đạt 80%.

    Tài liệu tham khảo

    Ahmed, E., Ahmed, E. E., Bisztray, G. Y. D. and Velich I. (2002). Plant regeneration from seedling explants of common bean (P. vulgaris L.). Acta Biologica Szegediensis 46: 27-28.

    Aragao, F. J. L. and Rech, E. L. (2001). Transgenic Common Bean (P. vulgaris). Biotechnology in Agriculture and Forestry 47: 269-283.

    Arellano, J., Fuentes, S. I., Castillo-Espana, P. and Hernandez, G. (2009). Regeneration of different cultivars of common bean (P. vulgaris L.) via indirect organogenesis. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 96:11–18.

    Arnaldos, T. L., Munoz, R., Ferrer, M. A. and Calderon, A. A. (2001). Changes in phenol content during strawberry (Fragaria x ananasa, cv. Chandler) callus culture. Plant Physiology 113: 315-322.

    Colpaert, N., Tilleman, S., van Montagu, M., Gheysen, G. and Terryn, N. (2008). Composite P. vulgaris plants with transgenic roots as research tool. African Journal of Biotechnology 7: 404-408.

    Dang, W. and Wei, Z. M. (2009). High frequency plant regeneration from the cotyledonary node of common bean. Biologia Plantarum 53: 312-316.

    Gamborg, O. L., Miller, R. A. and Ojima, K. (1968). Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research 50: 151-158.

    Khan, S., Ahmad, M., Ghaffar, M., Fida, M. and Swati, Z. A. (2010). In vitro micro-propagation of indigenous chick pea (Cicer arietinum L.) cultivars, KK-1 and Hassan-2K. African Journal of Agricultural Research 5: 2934-2938.

    Kwapata, K., Sabzikar, R., Sticklen, M. B. and Kelly, J. D. (2010). In vitro regeneration and morphogenesis studies in common bean. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 100: 97–105.

    Lamseejan, S., Tonguthaisri, T., Wongpiyasati, A., Unsrisong, S., Jonglaekha, N., and Kumpai, S. (1992). Induction of multiple shoots from cotyledonary node of red kidney bean (P. vulgaris L.). Natural Sciences 26: 227-233.

    Mahamune, S. E., Bansode, R. P., Sangle, S. M., Waghmare, V. A., Pandhure, N. B. and Kothekar, V. S. (2011). Callus induction from various explants of French bean (P. vulgaris L.). Journal of Experimental Sciences 2: 15-16.

    Mallikarjuna, K. and Rajendrudu, G. (2007). High frequency in vitro propagation of Holarrhena antidysenterica from nodal buds of mature tree. Biologia Plantarum 51: 525-529.

    Mohamed, M. F., Coyne, D. P., Read, P. E. (1993). Shoot organogenesis in callus induced from pedicel explants of common bean (P. vulgaris L.). Journal of American Society for Horticulture Science 118: 158–162.

    Mohamed, M. F., Read, P. E. and Coyne D. P. (1992). Plant regeneration from in vitro culture of embryonic axis explants in common and tepary beans. American Society of Horticulture Science 117: 332-336.

    Mohamed-Yasseen, Y. and Splittstoesser, W. E. (1990). Regeneration of soybean [Glycine max (L) Merr.] from the seedling apex, stem node, cotyledonary node, and cotyledons. Plant Growth Regulator Society of America 18: 203 – 210.

    Murashige T., Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures. Plant Physiology 15:473–497.

    Nagl W., Ignacimuthu, S. and Becker, J. (1997). Genetic engineering and regeneration of Phaseolus and Vigna. State of the art and new attempts. Plant Physiology 150: 625–644.

    Nedev, T., Todorova, R., Kosturkova, G., Akitha Devi, M. K., Sakthivelu, G., Giridhar, P., Rajasekaran, T., Ravishankar, G. A. (2007). Variation in in vitro morphogenic response to growth regulators in soybean genotypes from India and Bulgaria. Bioautomation 8: 193 – 200.

    Svetleva, D. L., Veltcheva, M. R. and Bhowmik, G. (2003). Biotechnology as a useful tool in common bean (P. vulgaris L.) improvement. Euphytica 131: 189-200.

    Trigiano, R. N. and Gray, D. N. (2010). Plant Tissue Culture, Development, and Biotechnology.

    Veltcheva, M. R. and Svetleva, D. L. (2005). In vitro regeneration of P. vulgaris L. via organogenesis from petiole explants. Journal of Central European Agriculture 6: 53-58.

    Zambre, M. A., Clerq, J. and Vranova, E. (1998). Plant regeneration from embryo derived callus in P. vulgaris L. (common bean) and Phaseolus acutifolius A. Grey (tepary bean). Plant Cell Reports 17: 626–630.

    Zambre, M., Goossens, A., Cardona, C., Van Montagu, M., Terryn, N. and Angenon, G. (2005). An efficient and reproducible Agrobacterium-mediated transformation systems for cultivated Phaseolus acutifolius (tepary bean). Theoretical and Applied Genetics 110: 914-924.