XÂY DỰNG HỆ THỐNG TÁI SINH IN VITRO TRÊN CÂY LÚA

Ngày nhận bài: 12-06-2014

Ngày duyệt đăng: 20-09-2014

Ngày xuất bản: 06-08-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.8.

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 12 Số 8 (2014)

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Hương, P., Thảo, N., Linh, N., Hiếu, N., & Thảo, N. (2025). XÂY DỰNG HỆ THỐNG TÁI SINH IN VITRO TRÊN CÂY LÚA. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 12(8), 1249–1257. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.8.

XÂY DỰNG HỆ THỐNG TÁI SINH IN VITRO TRÊN CÂY LÚA

Phan Thị Hương 1, 2 , Nguyễn Thị Phương Thảo 1, 2 , Nguyễn Thị Thùy Linh 1, 2 , Nguyễn Tràng Hiếu 1, 2 , Ninh Thị Thảo (*) 1, 2

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Trung tâm khảo nghiệm Khuyến nông Khuyến ngư Thái Bình
  • 2 Khoa Công nghệ sinh học, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    Chuyển gen, lúa, mô sẹo, tái sinh chồi

    Tóm tắt


    Nghiên cứu được thực hiện với mục đích đánh giá khả năng tạo mô sẹo và tái sinh của bảy giống lúa bao gồm BM9630, NV1, NV2, NV3, J02 (thuộc nhóm japonica), Hương cốm và BC15 (thuộc nhóm indica). Tỷ lệ tạo mô sẹo của các giống lúa nghiên cứu trong khoảng 72-98%; trong đó, giống Hương cốm, NV1 và J02 có tỷ lệ tạo mô sẹo trên 90% (tương ứng 97%, 92% và 98%). Môi trường tạo mô sẹo thích hợp đối với giống Hương cốm và các giống japonica là môi trường muối N6 + vitamin B5 + 3 mg/l 2,4-D + 100 mg/l myo-inositol + 500 mg/l L-proline + 500 mg/l L-glutamin + 300 mg/l casein hydrolysate + 30 g/l sucrose. Khảo sát ảnh hưởng của 3 điều kiện nhiệt độ 22, 28 và 30oC trong giai đoạn cảm ứng tạo mô sẹo cho thấy nhiệt độ có ảnh hưởng rõ rệt đến khả năng tạo cũng như chất lượng mô sẹo. Trong đó nhiệt độ 280C là thích hợp nhất cho cảm ứng tạo mô sẹo. Nghiên cứu đã xác định được khả năng tái sinh chồi từ mô sẹo của 3 giống Hương cốm, BC15 và J02 trên 4 môi trường khác nhau, trong đó, giống BC15 tái sinh kém trên tất cả các môi trường nghiên cứu. Hai giống J02 và Hương cốm có khả năng tái sinh cao trên môi trường muối N6 + vitamin B5 + 3 mg/l BAP + 1 mg/l α-NAA + 100 mg/l myo-inositol + 500 mg/l L-proline + 500 mg/l L-glutamin + 300 mg/l casein hydrolysate + 30 g/l sucrose.

    Tài liệu tham khảo

    Bartels D. and Ramanjulu S. (2005). Drought and salt tolerance in plant. Critical Reviews in Plant Sciences, 24: 23-58.

    Chu C.C., Wang C.C., Sun C.S., Msu C., Yin K.C., Chu C.Y. and Bi F.Y. (1975). Establishment of an efficient medium for anther cultures of rice through comparative experiments on nitrogen sources. Science China Mathematics, 18(5): 659-668.

    Datta K. and Datta S.K. (2006). Indica rice (Oryza sativa, BR29 and IR64). Agrobacterium protocols, methods in biology, 343: 201-212.

    Gamborg O.L, Miller R.A and Ojima K. (1968). Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research, 50: 151-158.

    Hoa T.T.C., Bahagiawati A. and Hodges T.K. (1999). Agrobacterium - mediated transfomation of Indica rice cultivars grown in Vietnam. Omonrice, 7: 70-79.

    Hoque K.M.A., Azdi Z.A and Shamsul H.P (2013). Development of callus initiation and regeneration system of different indigenous indica rice varieties. Journal of Biology 1(2): 46-51.

    Jaruwan S., Sanha P., Preecha P. and Pornthap T. (2008). Callus induction and influence of culture condition and culture medium on growth of Thai Aromatic rice, Khao Dawk Mali 105, cell culture. World Applied Sciences Journal 5(2): 246-251.

    Mannan M.A., Sarker T.C, Akhter M.T, Kabir A.H and Alam M.F. (2013). Indirect plant regeneration in aromatic rice (Oryza sativa L.) var. “Kalijira” and “Chinigura”. Acta agriculturae Slovenica 101 (2): 231-238.

    Murashige T. and Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiology Plant 15: 473-497.

    Nguyễn Thị Phương Thảo, Nguyễn Tràng Hiếu, Phan Thị Hương, Nguyễn Thị Thùy Linh (2013). Thiết kế vector mang miRNA nhân tạo ức chế đặc hiệu sự biểu hiện của gen MPG1 ở nấm đạo ôn (Magnaporthe grisea) gây bệnh trên lúa. Tạp chí Khoa học và Phát triển, 11(6): 857- 867.

    Ozawa K. (2009). Establishment of a high efficiency Agrobacterium - mediated transformation system of rice (Oryza sativa L.). Plant Science 176: 522-527.

    Phan Thị Thu Hiền (2012). Khả năng tạo callus và tái sinh cây của tập đoàn 31 giống lúa nương miền Bắc Việt Nam phục vụ công tác chuyển gen. Tạp chí khoa học và Phát triển, 10(4): 567-575.

    Prasad B.D., Jha S. and Chattoo B.B. (2008). Transgenic indica rice expressing Mirabilis jalapa antimicrobial protein (Mj-AMP2) shows enhanced resistance to the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. Plant Science 175: 364-371.

    Rahman Z.A. (2010). Production of transgenic Indica rice (Oryza sativa L.) Cv. MR 81 via particle bombardment system. Emirates Journal of Food and Agriculture 22(5): 353-366.

    Ramesh M., Murugiah V. And Gupta A. K. (2009). Efficient in vitro plant regeneration via leaf base segments of india rice (Oryza sativa L.). Indian Journal of Experimental Biology: 47: 68.

    Revathi S. and và Pillai M. A. (2011). In vitro callus induction in rice (Oryza sativa L.). Research in Plant Biology 1(5): 13-15.

    Scardaci S.C., Webster R.K., Greer C.A., Hill J.E., Williams J.F., Mutters R.G., Brandon D.M., McKenzie K.S. and Oster J.J. (2003). Rice blast: A new diseases in California. Agronomy Fact Sheet Series.

    Verma D., Joshi R., Shukla A. And Kumar P. (2011). Protocol for in vitro somatic embryogenesis and regeneration of rice (Oryza sativa L.). Indian Journal of Experimental Biology, 49: 958-963.