NHÂN DÒNG VÔ TÍNH CÂY LAN HỒ ĐIỆP PHALAENOPSIS SOGO YUKIDIAN

Ngày nhận bài: 16-10-2014

Ngày duyệt đăng: 24-11-2014

Ngày xuất bản: 06-08-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.8.

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 12 Số 8 (2014)

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Sơn, N., Thạch, N., Anh, N., Nga, H. ., & Nguyệt, H. (2025). NHÂN DÒNG VÔ TÍNH CÂY LAN HỒ ĐIỆP PHALAENOPSIS SOGO YUKIDIAN . Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 12(8), 1283–1293. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.8.

NHÂN DÒNG VÔ TÍNH CÂY LAN HỒ ĐIỆP PHALAENOPSIS SOGO YUKIDIAN

Nguyễn Thị Sơn (*) 1, 2 , Nguyễn Quang Thạch 1, 2 , Nguyễn Thị Lý Anh 1, 2 , Hoàng Thị Nga 1, 2 , Hoàng Thị Ánh Nguyệt 1, 2

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Viện Sinh học Nông nghiệp, Học viện Nông nghiệp Việt Nam,
  • 2 Học viên cao học, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    Nhân nhanh, Phalaenopsis Sogo Yukidian, protocorm, phát hoa

    Tóm tắt


    Lan Phalaenopsis Sogo Yukidian (Hồ điệp hoa trắng nhị vàng) là giống hoa đẹp được ưa chuộng và có giá trị thương mại cao trên thế giới. Việc nghiên cứu nhân giống vô tính giống lan này đã góp phần tạo ra nguồn cây giống có chất lượng tốt và đồng đều, đáp ứng nhu cầu của sản xuất. Kết quả nghiên cứu đã chỉ rõ: Nguồn vật liệu ban đầu là phát hoa với chế độ khử trùng tối ưu là khử trùng kép bằng CaOCl2 15% trong 7 phút và Johnson 1% trong 3 phút. Môi trường tốt nhất cho sự phát sinh hình thái protocorm từ các bộ phận soma in vitro là MS + 2,0 mg/l BA + 6 g/l agar. Môi trường MS + 0,5 mg/l BA + 0,5 mg/l α-NAA + 6 g/l agar là môi trường tạo chồi tốt nhất. Chồi lan có tốc độ lớn nhanh nhất trên môi trường MS bổ sung 10% nước dừa (ND). Môi trường MS + 10% ND + 3,0 mg/l BA + 6 g/l agar là môi trường tối ưu để nhân nhanh chồi lan với HSN chồi cao nhất là 4,20 lần sau 6 tuần nuôi cấy. Môi trường MS + 10% ND + 0,5 g/l THT + 6 g/l agar là môi trường thích hợp nhất để tạo cây hoàn chỉnh từ chồi.

    Tài liệu tham khảo

    Arditti and Ernst (1993). Micropropagation of orchid. New York. John Wiley & Sons, Inc.

    George, EF. and Sherrington, PD. (1984). Plant propagation by Tissue Culture. Eastern Press. England.

    Griesbach, R.J (2002). Development of Phalaenopsis Orchids for the Mass-Market. p. 458-465.

    Ichihashi and Hiraiwa (1996). Effects of solidifier, coconut water and carbohydrate sourse on groeth of embryogennic callus in Phalaenopsis and allied general. J. Orchid Soc. India, 10: 81-88.

    Park et al., (2001). Mass multiplication of protocorm-like bodies using bioreactor system and subsequent plant regeneration in Phalaenopsis. Plant Cell, Tissue and organ Culture, 63: 67-72.

    Parisa Shekarriz, Mohsen Kafi, Shirin Dianati Deilamy, Masoud Mirmasoumi (2014). Coconut water and peptone improve seed germination and protocorm like. Agriculture Science Developments, 3(10): 317-322.

    Polonca KOŠIR (2004). Direct shoot regeneration from nodes of Phalaenopsis orchids. Acta agriculturae slovenica, 83 - 2, november 2004, p. 233 - 242

    Sagawa and Kunasaki (1982). Clonal propagation of orchids by tissue culture. In: Proc. 5th Cong. Plant Tissue and Cell Culture, p. 683-684.

    Tanaka et al., (1974). Studies on the clonal propagation of monopodial orchid by tissue culture. I. Formation of protocorm -like bodies from leaf tissue in Phlaenopsis and Vanda in vitro. J. Jpn. Soc. Hortic. Sci. (Citied in Tanaka et al., 1976).

    Tanaka (1990). Micropropagation of Phalaenopsis through leaf segment culture, In: Proceedings of NIOS 90. Nagoya, p.113-119.

    Zhang et al., (2004). Tissue culture and rapid micropropagation of Phalaenopsis amabilis. Journal of Plant Resources and Environment, 13: 38-40