XÂY DỰNG QUY TRÌNH VI NHÂN GIỐNG CÂY NGỌC HÂN (Angelonia goyazenzsis Benth)

Ngày nhận bài: 25-07-2014

Ngày duyệt đăng: 07-10-2014

Ngày xuất bản: 06-08-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.7.

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 12 Số 7 (2014)

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Lộc, P., Luân, N., Biên, L., & Liệu, N. (2025). XÂY DỰNG QUY TRÌNH VI NHÂN GIỐNG CÂY NGỌC HÂN (Angelonia goyazenzsis Benth). Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 12(7), 1120–1124. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.7.

XÂY DỰNG QUY TRÌNH VI NHÂN GIỐNG CÂY NGỌC HÂN (Angelonia goyazenzsis Benth)

Phạm Văn Lộc (*) 1 , Nguyễn Thành Luân 1 , Lại Đình Biên 1 , Nguyễn Thị Liệu 1

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Đại học Công nghiệp Thực phẩm Thành phố Hồ Chí Minh

    • Từ khóa

    Angelonia goyazenzsis, BA, chồi bất định, IBA, vi nhân giống

    Tóm tắt


    Trong nghiên cứu này chúng tôi khảo sát quy trình vi nhân giống cây Ngọc hân (Angelonia goyazenzsis Benth), bao gồm tái sinh chồi bất định từ lá, tăng sinh chồi, tạo rễ và chuyển cây ra vườn ươm. Mẫu lá non sau khi khử trùng được nuôi cấy trên môi trường MS có bổ sung 0,2 mg/l NAA kết hợp với BA ở các nồng độ khác nhau để tái sinh chồi. Tỷ lệ tái sinh đạt 100% và số lượng chồi trên mỗi mẫu cao nhất môi trường bổ sung BA ở nồng độ 1,0 mg/l. Môi trường MS bổ sung BA 1,5 mg/l là môi trường thích hợp nhất cho tăng sinh chồi. Chồi tạo rễ hoàn chỉnh trên môi trường MS bổ sung 0,1 mg/l IBA. Cây con hoàn chỉnh được chuyển ra vườn ươm để thích nghi. Trên giá thể kết hợp giữa cát và trấu hun với tỷ lệ 1:1 có tỷ lệ sống 100%. Kết quả này có thể được sử dụng trong nhân giống cây Ngọc hân ở quy mô lớn cũng như tạo tiền đề cho những nghiên cứu tiếp theo trên đối tượng này.

    Tài liệu tham khảo

    Chang H., Charkabarty D., Hahn E. and Paek K. (2003). Micropropagation of calla lily (Zantedeschia albomaculata) via in vitro shoot tip proliferation. In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 39(2): 129-134

    Choi J., Kim H., Lee C., Bae J., Chung Y., Shin J. and Hyung N. (2001). Efficient and simple plant regeneration via organogenesis from leaf segment cultures of persimmon (Diospyros kaki Thunb.). In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 37(2): 274-279.

    Dias M.C., Almeida R. and Romano A. (2002). Rapid clonal multiplication of Lavandula viridis L’H´er through in vitro axillary shoot proliferation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 68: 99-102.

    Giovanni I. and Marcello A. (2008). Micropropagation of Metrosideros excelsa. In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 44: 330-337

    Molla M.M.H., Dilafroza M. K., Khatun M.M., Al-amin M. and Malek M.A., (2004). In vitro rooting and ex vitro plantlet establishment of BARI banana 1 (Musa sp.) as influenced by different concentration of IBA (Indole 3- butyric Acid). Asian Journal of Plant Sciences, 3(2): 196-199.

    Murashige T. and Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiol., 15: 473-497

    Puhan P. and Rath S. P. (2012). In vitro micropropagation of Desmodium gangeticum (L.) DC (Fam-Fabaceae): a medicinal legume through axillary bud multiplication. Pakistan Journal of Biological Sciences, 15(10): 477-483.

    Thirugnanasampandan R., Mahendran G. and Narmatha B. V., (2010). High frequency in vitro propagation of Isodon wightii (Bentham) H. Hara. Acta Physiol. Plant, 32: 405-409.

    Bùi Trang Việt (2000). Sinh lý thực vật đại cương (Phần II. Phát triển). Nhà xuất bản Đại học Quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh, tr. 88.

    Vinterhalter B., Milošević D., Janković T., Milojević J. and Vinterhalter D. (2012). In vitro propagation of Gentiana dinarica Beck. Central European Journal of Biology, 7(4): 690-697.

    Zubeda C. , Imran F., Waseem A., Hamid R., Bushra M. and Azra Q. (2001). Varietal response of Lycopersicon esculentum L. to callogenesis and regeneration. Journal of biological sciences, 1(12): 1138-1140.