Nhân giống cây mã đề (Plantago major L.) bằng kỹ thuật nuôi cấy mô

Date Received: 29-09-2016

Date Accepted: 20-12-2016

Date Published: 06-08-2025

##submissions.doi##: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2017.15.3.

Issue: Vol. 15 No. 3 (2017)

Section:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

How to Cite:

Ay, N., V.Duy, M., Baatartsogt, O., Altantsetseg, K., & Enkhchimeg, V. (2025). Nhân giống cây mã đề (Plantago major L.) bằng kỹ thuật nuôi cấy mô. Vietnam Journal of Agricultural Sciences, 15(3), 282–289. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2017.15.3.

Nhân giống cây mã đề (Plantago major L.) bằng kỹ thuật nuôi cấy mô

N. V. Ay , M. V.Duy , O. Baatartsogt , Kh. Altantsetseg , V. Enkhchimeg (*)

  • Tác giả liên hệ: [email protected]

    • Keywords

    Cây mã đề, chất điều hòa sinh trưởng, nuôi cấy mô, Plantago major L., thuần dưỡng

    Abstract


    Cây mã đề (Plantago major L.) có nguồn gốc từ miền Viễn Đông, là loại dược liệu được sử dụng từ xa xưa. Kỹ thuật tạo và nuôi cấy mô sẹo cũng như tái sinh chồi từ cuống lá và lá non cây mã đề P. major L. đã được thực hiện. Kết quả nghiên cứu cho thấy: (i) môi trường thích hợp cho sự tạo mô sẹo là môi trường MS bổ sung 2,4-D 1 mg/L kết hợp với BA 0,5 mg/L; (ii) Từ các mô sẹo hình thành, có thể tái sinh chồi cây mã đề trên môi trường MS bổ sung TDZ 1 mg/L hoặc TDZ 1 mg/L kết hợp với NAA 0,5 mg/L sẽ cho hiệu quả cao (tương ứng 100 và 96%); (iii) Từ các chồi tái sinh có thể cấy truyền trên môi trường MS bổ sung BA nồng độ từ 5 mg/L nhằm gia tăng số chồi; (iv) Trong giai đoạn tạo rễ in vitro, có thể sử dụng môi trường MS bổ sung NAA nồng độ 2 mg/L. Cây con sau khi tạo rễ đều sinh trưởng, phát triển tốt và có hình thái như cây mẹ trên các loại giá thể: phân rơm mục + tro trấu (tỷ lệ 1:1), cát + đất (1:1); đất hoặc cát khi thuần dưỡng trong nhà lưới.

    References

    Basma, M.A.R., Hiba A.H. and Muna K.M. (2012). The study of antibacterial activity of Plantago major and Ceratonia siliqua. The Iraqi Postgraduate Medical Journal, 11(1): 130 - 135.

    Bekman P. and Lukens T. (1997). Simple step for pot calla success. Grower Talks, 60(12): 49 - 54.

    Chandra S., Bandopadhyay R., Kumar V. and Chandra R. (2010). Acclimatization of tissue cultured plantlets: from laboratory to land. Biotechnol Let, DOI 10.1007/s10529 - 010 - 0290 - 0, 32: 1199 - 1205.

    Chatfield J.M. and Armstrong D.J. (1986). Regulation of cytokinin oxidase activity in callus tissues of Phaseolus vulgaris L. cv. Great Northern. Physiol. Plant, 80: 493 - 499.

    Driver J.A. and Suttle G.R. (1987). Nursery handling of propagles. In: Cell and Tissue Culture in Forestry (Bonga J.M. & Durzan D.J., eds.). Dortrecht, Netherlands, pp. 320 - 335

    Fons F., Gargadennec A. and Rapior S. (2008). Culture of Plantago species as bioactive components resources: a 20 year review and recent applications. Acta Bot. Gallica., 155(2): 277 - 300.

    George E. F. (1993). Plant propagation by tissue culture (2nd. Ed.). Exegetic Ltd., UK. 709p.

    Ho P.H. (2000). Illustrated Flora of Viet Nam. Youth Publication House, pp. 879 - 880.

    Hutchinson J.M. and Saxena P.K. (1996). Acetylsalicylic acid enhances and synchronizes thidiazuron - induced somatic embryogenesis in geranium (Pelargonium × Hortorum Bailey) tissue cultures. Plant Cell Rep., 15: 512 - 515.

    IAEA. (2004). Low cost options for tissue culture technology in developing countries. IAEA - TECDOC - 1384, ISBN: 92 - 0 - 115903 - X, ISSN: 1011 - 4289

    Kalia R. K., Singh R., Rai M. K., Mishra G. P., Singh S. R. and Dhawan A. K. (2011). Biotechnological interventions in sea buckthorn (Hippophae L.): current status and future prospects. Trees: DOI: 10.1007/s00468 - 011 - 0543 - 0, 25(4): 559 - 575.

    Kende H. and Zeevaart J.A. A. (1997). The five classical plant hormones. The Plant Cell, 9: 1197 - 1210.

    Kolak U., Boga M., Urusak E.A. and Ulubelen A. (2011). Constituents of Plantago major subsp. intermedia with antioxidant and anticholinesterase capacities. Turk J Chem, 35: 637 - 645

    Li Y. and Li P. (2005). In vivo culture method of Plantago major. Patent written in Chinese CN 1701657, 9p.

    Makowczynska J. and Andrzejewska - Golec E. (2000). Somatic embryogenesis in in vitro culture of Plantago asiatica L. Acta Soc. Bot. Pol., 69: 245 - 250.

    Makowczynska J. and Andrzejewska - Golec E. (2003). Micropropagation of Plantago asiatica L. through culture of shoot tips. Acta Societatis Botanicorum Poloniae, 72(3): 191 - 194.

    Mok M.C., Mok D.W.S., Armstrong D.J., Shado K., Isogai Y. and Okomoto T. (1982). Cytokinin activity of N - phenyl N - 1,2,3 - thiadiazol - 5 - ylurea (thidiazuron). Phytochem, 21: 1509 - 1511.

    Murashige T. and Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio - assays with tobaco tissue culture. Physiol. Plant., 15: 473 - 497.

    Murthy B. N. S., Murch S. J. and Saxena P. K. (1995). Thidiazuron - induced somatic embryogenesis in intact seedlings of peanut (Arachis hypogaea): endogenous growth regulator levels and significance of cotyledons. Physiol. Plant., 94: 268 - 276.

    Pourmorad F., Hosseinimehr S.J. and Shahabimajd N. (2006). Antioxidant activity, phenol and flavonoid contents of some selected Iranian medicinal plants, African J Biotechnol, 5(11): 1142 - 1145.

    Samuelsen A.B. (2000). The traditional uses, chemical constituents and biological activities of Plantago major L. A review. Journal of Ethnopharmacology, 71: 1 - 21.

    Souri E., Amin G., Farsam H. and Barazandeh Tehrani M. (2008). Screening of antioxidant activity and phenolic content of 24 medicinal plant extracts, DARU, 16(2): 83 - 87.

    Thomas J.C. and Ketterman F.R. (1986). Cytokinin activity induced by Thidiazuron. Plant Physiol., 81: 681 - 683.

    Tu Y. (1996). Tissue culture of asiatic plantain (Plantago asiatica). Zhongcaoyao, 27: 296 - 298.

    Van Huylenbroeck J.M. and Debergh P.C. (1996). Impact of sugar concentration in vitro on photosynthesis and carbon metabolism during ex vitro acclimatization of Spatiphyllum plantlets. Physiol. Plant., 96: 298 - 304.