Ngày nhận bài: 25-07-2014
Ngày duyệt đăng: 14-10-2014
Ngày xuất bản: 06-08-2025
Lượt xem
Download
Cách trích dẫn:
QUÁ TRÌNH PHÁT SINH HÌNH THÁI MÔ SẸO VÀ CHỒI CỦA CÂY LONG NÃO (Cinnamomum camphora (L.) Sieb.) NUÔI CẤY IN VITRO
,
Trần Văn Tiến
1, 2, 3, 4
,
Võ Thị Bạch Mai
1, 2, 3, 4
,
Trần Trọng Tuấn
1, 2, 3, 4
,
Nguyễn Hải Sơn (*)
1, 2, 3, 4
Từ khóa
Cây long não, chồi, mô sẹo, phát sinh hình thái, WPM
Tóm tắt
Sự phát sinh cơ quan (chồi, rễ) là một quá trình phức tạp, chịu ảnh hưởng của nhiều yếu tố nội sinh lẫn ngoại sinh. Do đó, để tìm hiểu sự hình thành các sơ khởi, nhiều kỹ thuật đã được sử dụng như vi giải phẫu, chất ức chế, bổ sung chất điều hòa sinh trưởng thực vật ngoại sinh… Trong nghiên cứu này, chúng tôi khảo sát ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật ngoại sinh lên sự phát sinh mô sẹo, chồi và quá trình phát sinh hình thái chồi của cây long não (Cinnamomum camphora (L.) Sieb.). Kết quả nghiên cứu cho thấy môi trường WPM có bổ sung 2% sucrose, 0,5 mg/l NAA và 0,2 mg/l BA tốt nhất cho việc hình thành mô sẹo. Môi trường WPM bổ sung 2% sucrose và 1 mg/l BA tốt nhất cho việc nhân nhanh chồi, xét về số lượng chồi trung bình và trọng lượng tươi. Kết quả giải phẫu hình thái chồi cho thấy các tế bào nhu mô vùng vỏ là nơi bắt đầu quá trình hình thành chồi.
Tài liệu tham khảo
Akiyoshi D.E., Morris R.O., Hinz R., Mischke B.S., Kosuge T., Garfinkel D.J., Gordon M.P., Nester W. (1983). Cytokinin/auxin balance in crowm gall tumors is regulated by specific loci in the T-DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80: 407 - 411.
Azad M. A. K., Yokota S., Ishiguri F., Yahara S., Yoshizawa N. (2005). Large-scale clonal propagation of Cinnamomum camphora (L.) nees and eberm, Bull Utsunomiya Univ For: 41.
Babu K.N., Sajina A., Minoo D., John C.Z., Mini P.M., Tushar K.V., Rema J., Ravindran P.N. (2003). Micropropagation of camphor tree (Cinnamomum camphora). Plant Cell Tiss Org Cult, 74: 179-183.
Bùi Trang Việt (2000). Sinh lý thực vật đại cương. Phần I: Dinh dưỡng. Nhà xuất bản Đại học Quốc gia thành phố Hồ Chí Minh.
Dixon R.A., Gonzales R.A. (1994). Plan Cell Culture: A Practical Approach. 2nd ed. Oxford University Press, New York: 230.
Duncan D.B. (1955). Multiple range and multiple F tests. Biometrics, 11: 1 - 42.
Gaspar T., Kevers C., Penel C., Greppin H., Reid D. M., Thrope T. A. (1996). Plant hormones and plant growth regulators in plant tissue culture. In vitro Cell Dev Biol Plant, 32: 272 - 289.
Hsia C. and Korban S.S. (1996). Organogenesis and somatic embryogenesis in callus culture of Rosa hybrid and Rosa chinesis minima. Plant Cell Tiss Org Cult., 44: 1 - 6.
Huang L.C., Huang B.L., Murashige T. (1998). A micropropagation protocol for Cinnamomum camphora, In vitro Cell Dev Biol Plant, 34: 141-146.
Letham D.S. (1974). Regulators of cell division in plant tissues XX. The cytokinins of coconut milk. Physiol. Plant, 32: 66 - 70.
Lloyd G., McCown B. (1980). Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Int Plant Prop Soc. Proc., 30: 421.
Morita M., Xing X.H., Unno H. (1999). Synchronized shoot regenation of rice (Oriza sativa L.) calli on solid medium by adjustment of intracellular 2,4 D concentration. Plant Cell Rep., 18: 633 - 639.
Nguyễn Bảo Toàn (2004). Nuôi cấy mô và tế bào thực vật. Nhà xuất bản Đại học Cần Thơ, pp. 28- 32.
Rayle D.L, Ross C.W., Robinson N. (1982). Estimation of osmotic parameters accompanying zeatin-induced growth of detached cucumber cotyledons. Plant Physiol., 70: 1634 - 1636.
White P.R. (1939). Potentially unlimited growth of excised callus in an artificial medium. Am. J. Bot., 26: 59-64.