Ngày nhận bài: 30-07-2014
Ngày duyệt đăng: 14-10-2014
Ngày xuất bản: 06-08-2025
Lượt xem
Download
Cách trích dẫn:
ẢNH HƯỞNG CỦA MỘT SỐ LOẠI ĐÈN CHIẾU SÁNG VÀ BÌNH NUÔI CẤY ĐẾN SỰ SINH TRƯỞNG, PHÁT TRIỂN CỦA GIỐNG CẨM CHƯỚNG HỒNG HẠC CẤY MÔ
,
Nguyễn Thị Lý Anh
1
,
Nguyễn Quang Thạch
1
,
Nguyễn Thị Hồng Thắm
1
Từ khóa
Cẩm chướng, Hồng Hạc, đèn LED, nhân nhanh, tạo cây hoàn chỉnh
Tóm tắt
Một số nghiên cứu về tác động của phổ ánh sáng trên các loại bình nuôi cấy đến sự sinh trưởng, phát triển của giống cẩm chướng Hồng Hạc đã được tiến hành trong giai đoạn nhân nhanh và tạo cây hoàn chỉnh. Kết quả chỉ ra trong giai đoạn nhân nhanh, sử dụng bình trụ nút bông hoặc túi nilon thoáng khí để nuôi cấy cho chất lượng cây giống tốt nhất. Đèn LED 13R-4B-3W cho cây sinh trưởng chiều cao tốt, tuy nhiên đèn LED 17R-3B lại có tác dụng kích thích cây tăng số lá, số chồi cao hơn và cho chất lượng cây giống tốt (nuôi cấy cây trong bình trụ nút bông đạt 21,53 lá/cây, số chồi là 5,67 chồi/cây. Khi nuôi cấy trong túi nilon thoáng khí đạt 26,60 lá/cây và cho số chồi là 7,30 chồi/cây). Bên cạnh đó, đèn LED 17R-3B cũng cho chất lượng cây nhân giống tốt hơn ở các công thức đèn khác. Trong giai đoạn tạo cây hoàn chỉnh, sử dụng bình trụ nút bông hoặc túi nilon thoáng khí để nuôi cấy kết hợp với sử dụng đèn LED 13R-4B-3W là tốt nhất (Chiều cao cây khi nuôi cấy trong bình trụ nút bông đạt 4,74cm, nuôi cấy trong túi nilon thoáng khí là 5,13cm. Số lá/cây đạt 11,73 lá trong bình trụ nút bông và đạt 12,20 lá trong túi nilon thoáng khí). Ngoài ra, đèn LED 13R-4B-3W còn làm tăng chất lượng cây giống so với các loại đèn khác trên tất cả các loại bình nuôi.
Tài liệu tham khảo
Gamborg OL, Phillips GC (1995). Plant cell, tissue and organ culture: Fundamental methods. Springer-Verlag Berlin Heidelberg GmbH, pp. 358
Jackson MB, Abbott AJ, Belcher AR, Hall KC, Butler R, Cameron J (1991). Ventilation in plant tissue cultures and effects of poor aeration on ethylene and carbon dioxide accumulation, oxygen depletion and explant development. Annals of Botany, 67: 229-237
Jain A, Husain S, Kothari SL (1997). Micropropagation of Dianthus caryophyllus L. - Control of vitrification. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology, 6: 35-37
Jordan KA, Norikane J, Takakura T (2001). Control of LED to achieve light quality and intensity in tissue culture and micro-propagation studies. Acta Hort., 562: 135-140
Kane ME, Philman NL (1992). Effect of culture vessel type on in vitro multiplication of Pontederia cordata L. Proc. Fla. State Hort. Soc., 105: 213-215
Kharrazi M, Nemati H, Tehranifar A, Bagheri A, Sharifi A (2011). In vitro culture of Carnation (Dianthus caryophyllus L.) focusing on the problem of vitrification. J. BIOL. ENVIRON. SCI., 5(13): 1-6
Pasqualetto PL (1990). Vitrification in plant tissue culture. In R Rodríguez, RS Tamés, DJ Durzan, eds, Plant Aging, Springer US, 186: 133-137
Rossetto M, Dixon K, Bunn E (1992). Aeration: A simple method to control vitrification and improve in vitro culture of rare australian plants. In Vitro - Plant, 28: 192-196
Sato S, Hagimori M, Iwai S (1993). Recovering vitrified carnation (Dianthus caryophyllus L.) shoots using Bacto-Peptone and its subfractions. Plant Cell Reports, 12: 370-374
Stutte WG (2009). Light-emitting diodes for manipulating the phytochrome apparatus. Hortscience, 44: 231-234
Yanagi T, Yachi T, Okuda N, Okamoto K (2006). Light quality of continuous illuminating at night to induce floral initiation of Fragaria chiloensis L. CHI-24-1. Scientia Horticulturae, 109: 309-314
Yano A, Fujiwara K (2012). Plant lighting system with five wavelength-band light-emitting diodes providing photon flux density and mixing ratio control. Plant Methods, 8: 1-12