ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG PHÁT HIỆN KHÁNG THỂ KHÁNG VIRUS DỊCH TẢ LỢN CHÂU PHI  BẰNG PHƯƠNG PHÁP ELISA

Ngày nhận bài: 14-05-2025

Ngày duyệt đăng: 09-03-2026

Ngày xuất bản: 28-03-2026

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2026.24.3.04

Lượt xem

4

Download

5

Số: Tập 24 Số 3 (2026): Tạp chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam

Chuyên mục:

CHĂN NUÔI – THÚ Y – THỦY SẢN

Cách trích dẫn:

Hạnh, V., Hiệp, V., Hưng, L., Phương, N., Hoa, N., Huy, D., … Hương, L. (2026). ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG PHÁT HIỆN KHÁNG THỂ KHÁNG VIRUS DỊCH TẢ LỢN CHÂU PHI  BẰNG PHƯƠNG PHÁP ELISA. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 24(3), 319–328. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2026.24.3.04

ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG PHÁT HIỆN KHÁNG THỂ KHÁNG VIRUS DỊCH TẢ LỢN CHÂU PHI  BẰNG PHƯƠNG PHÁP ELISA

Vũ Đức Hạnh 1 , Vũ Lại Xuân Hiệp 2 , Lương Quốc Hưng 2 , Nguyễn Thị Minh Phương 1 , Nguyễn Thị Hoa 1 , Dương Nhật Huy 3 , Bùi Minh Huy 1 , Đặng Thị Thuỳ Linh 1 , Nguyễn Thị Phương Đông 1 , Phạm Hồng Trang 1 , Nguyễn Văn Giáp 1 , Lại Thị Lan Hương (*) 1

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Khoa Thú y, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
  • 2 Nebraska Center for Virology, University of Nebraska-Lincoln, Lincoln, NE 68583, USA
  • 3 Công ty cổ phần Hưng Gia Nam

    • Từ khóa

    Dịch tả lợn châu Phi, ELISA, huyết thanh, dịch miệng

    Tóm tắt


    Nghiên cứu được thực hiện nhằm đánh giá khả năng phát hiện kháng thể kháng virus Dịch tả lợn châu Phi của phương pháp iELISA, sử dụng protein tái tổ hợp p30 làm kháng nguyên phủ, trên nền mẫu huyết thanh và dịch miệng. Tổng cộng 84 mẫu cặp (mỗi cặp gồm huyết thanh và dịch miệng của cùng một cá thể) đã được thu thập, bao gồm 26 mẫu âm tính và 58 mẫu lấy từ các đàn mắc Dịch tả lợn châu Phi (25 mẫu cấp tính và 33 mẫu mạn tính). Kết quả đánh giá cho thấy phương pháp iELISA đạt độ đặc hiệu chẩn đoán 100% trên cả nền mẫu huyết thanh và dịch miệng, không ghi nhận phản ứng chéo hay dương tính giả. Khi so sánh với kít ELISA tham chiếu thương mại (Ingezim PPA Compac), phương pháp iELISA thể hiện sự đồng thuận cao trên mẫu huyết thanh với tỷ lệ 90,47% và hệ số Cohen's Kappa đạt 0,81. Đối chiếu trên cùng cá thể, hàm lượng kháng thể trong dịch miệng có tương quan tuyến tính thuận với huyết thanh (r = 0,765, P <0,001) và có mức độ đồng thuận chẩn đoán đáng kể (Kappa = 0,73). Hơn thế, phương pháp iELISA trên cả hai nền mẫu đều phản ánh xu hướng biến đổi đáp ứng miễn dịch theo giai đoạn bệnh thông qua sự gia tăng giá trị S/P từ giai đoạn cấp tính sang mạn tính.

    Tài liệu tham khảo

    Cerriteño-Sánchez J.L., García-Cambrón J.B., Zavala-Ocampo P.L., Ganges L. & Cuevas-Romero J.S. (2025). Development and Standardization of Indirect ELISA for African Swine Fever Virus Using Recombinant p30 Protein Produced in Prokaryotic System. National Library of Medicine 12(10): 995. Cho K.H., Hong S.K., Jang M.K., Ryu J.H., Kim H.J., Lee Y.R., Roh I.S., Sohn H.J., Kang H.E. & Park J.Y. (2022). Comparison of the Virulence of Korean African Swine Fever Isolates from Pig Farms during 2019-2021. Viruses. 14(11). Gallardo C., Nieto R., Soler A., Pelayo V., Fernández-Pinero J., Markowska-Daniel I., Pridotkas G., Nurmoja I., Granta R. & Simón A. (2015). Assessment of African swine fever diagnostic techniques as a response to the epidemic outbreaks in Eastern European Union countries: how to improve surveillance and control programs. Journal of clinical microbiology. 53(8): 2555-2565. Gallardo C., Soler A., Nieto R., Carrascosa A.L., De Mia G.M., Bishop R.P., Martins C., Fasina F.O., Couacy-Hymman E., Heath L., Pelayo V., Martín E., Simón A., Martín R., Okurut A.R., Lekolol I., Okoth E. & Arias M. (2013). Comparative evaluation of novel African swine fever virus (ASF) antibody detection techniques derived from specific ASF viral genotypes with the OIE internationally prescribed serological tests. Vet Microbiol. 162(1): 32-43. Gimenez-Lirola L.G., Mur L., Rivera B., Mogler M., Sun Y., Lizano S., Goodell C., Harris D.L., Rowland R.R., Gallardo C., Sanchez-Vizcaino J.M. & Zimmerman J. (2016). Detection of African Swine Fever Virus Antibodies in Serum and Oral Fluid Specimens Using a Recombinant Protein 30 (p30) Dual Matrix Indirect ELISA. PLoS One. 11(9): e0161230. Landis J.R. và Koch G.G. (1977). The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 33(1): 159-74. Mur L., Gallardo C., Soler A., Zimmermman J., Pelayo V., Nieto R., Sánchez-Vizcaíno J.M. & Arias M. (2013). Potential use of oral fluid samples for serological diagnosis of African swine fever. Veterinary Microbiology. 165(1): 135-139. Nga B.T.T., Dao B.T.A., Thi L.N., Osaki M., Kawashima K., Song D., Salguero F.J. & Le V.P. (2020). Clinical and pathological study of the first outbreak cases of African swine fever in Vietnam, 2019. Frontiers in Veterinary Science. 7. Revilla Y., Perez-Nunez D. & Richt J.A. (2018). African swine fever virus biology and vaccine approaches. Advances in virus research. 100: 41-74. Sánchez-Vizcaíno J. & Mur L. (2013). African swine fever diagnosis update. In: Vaccines and diagnostics for transboundary animal diseases. Karger Publishers. pp. 159-165. Sánchez-Vizcaíno J., Mur L., Gomez-Villamandos J. & Carrasco L. (2015). An update on the epidemiology and pathology of African swine fever. Journal of comparative pathology. 152(1): 9-21. Schambow R., Giménez-Lirola L.G., Hanh V.D., Huong L.T.L., Lan N.T., Trang P.H., Luc D.D., Bo H.X., Chuong V.D., Rauh R., Nelson W., Mora-Díaz J.C., Rovira A., Culhane M.R. & Perez A.M. (2023). Modeling the accuracy of a novel PCR and antibody ELISA for African swine fever virus detection using Bayesian latent class analysis. Frontiers in Veterinary Science. Vol. 10. Shen Z., Qiu W., Luan H., Sun C., Cao X., Wang G. & Peng J. (2023). I329L protein-based indirect ELISA for detecting antibodies specific to African swine fever virus. National Library of Medicine. Vol. 13. Tignon M., Gallardo C., Iscaro C., Hutet E., Van Der Stede Y., Kolbasov D., De Mia G.M., Le Potier M.-F., Bishop R.P., Arias M. & Koenen F. (2011). Development and inter-laboratory validation study of an improved new real-time PCR assay with internal control for detection and laboratory diagnosis of African swine fever virus. Journal of Virological Methods. 178(1): 161-170. Tran H.T.T., Truong A.D., Dang A.K., Ly D.V., Nguyen C.T., Chu N.T., Nguyen H.T. & Dang H.V. (2020). Genetic characterization of African swine fever viruses circulating in North Central region of Vietnam. Transboundary and Emerging Diseases. Truong A.D., Ly D.V., Vu T.H., Nguyen T.C., Chu T.N., Nguyen H.T., Pham N.T., Tran H.T.T. & Dang H.V. (2020). Unexpected cases in field diagnosis of African swine fever virus in Vietnam: The needs consideration when performing molecular diagnostic tests, Open Veterinary Journal. 10(2): 189-197.

    Van Phan Le D.G.J., Yoon S.-W., Kwon H.-M., Trinh T.B.N., Nguyen T.L., Bui T.T.N., Oh J., Kim J.B., Cheong K.M. & Van Tuyen N. (2019). Outbreak of African swine fever, Vietnam, 2019, Emerging infectious diseases. 25(7): 1433. Wang A., Zhao H., Liu H., Chen Y., Zhou J., Zhu X., Liang C., Ding P., Liu E. & Zhang G. (2025). Detection of African swine fever virus antibodies using p11.5 and p14.5 protein-based indirect ELISA. Virology. 603: 110335.