CHUYỂN GEN KHÁNG SÂU cry1Ab, cry1B-cry1Ab VÀO CÂY MÍA (Saccharum officinarum L.)

Ngày nhận bài: 25-07-2014

Ngày duyệt đăng: 14-10-2014

Ngày xuất bản: 06-08-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.7.

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 12 Số 7 (2014)

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Lộc, P., Dương, H., Trường, M., Đức, L., Hà, T., Thành, V., … Hồ, N. (2025). CHUYỂN GEN KHÁNG SÂU cry1Ab, cry1B-cry1Ab VÀO CÂY MÍA (Saccharum officinarum L.). Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 12(7), 1058–1067. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.7.

CHUYỂN GEN KHÁNG SÂU cry1Ab, cry1B-cry1Ab VÀO CÂY MÍA (Saccharum officinarum L.)

Phan Tường Lộc (*) 1 , Hoàng Văn Dương 1 , Mai Trường 1 , Lê Tấn Đức 1 , Trần Thị Ngọc Hà 1 , Văn Đắc Thành 1 , Phạm Đức Trí 1 , Nguyễn Thị Thanh 1 , Nguyễn Hữu Hồ 1

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Viện Sinh học Nhiệt đới, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam

    • Từ khóa

    Agrobacterium tumefaciens, cây mía, chuyển gen, cry1Ab, cry1B-cry1Ab, kháng sâu

    Tóm tắt


    Giống mía VN84-4137 qua bước đầu khảo sát khả năng đáp ứng chuyển gen với các kết quả khả quan, được tiếp tục thực hiện các bước trong nghiên cứu biến nạp gen Bt tổng hợp cry1Ab và gen lai tổng hợp cry1B-cry1Ab. Mô sẹo sau khi gây nhiễm với Agrobacterium tumefaciens được chọn lọc trên môi trường tạo mô sẹo có phosphinothricin (PPT) 3 mg/l. Các khối mô sẹo phát triển tốt được chuyển sang môi trường tái sinh chọn lọc để nhận các chồi kháng. Ba dòng chuyển gen cry1Ab và 1 dòng chuyển gen cry1B-cry1Ab được xác định sau khi phân tích di truyền bằng PCR và Southern blot. Khi kiểm tra biểu hiện protein với que thử nhanh, cả bốn dòng chuyển gen đều cho kết quả dương tính. Các cây chuyển gen đều có kiểu hình bình thường và phát triển tốt khi trồng trong vườn ươm.

    Tài liệu tham khảo

    Phan Tường Lộc, Hoàng Văn Dương, Mai Trường, Lê Tấn Đức, Trần Thị Ngọc Hà, Văn Đắc Thành, Phạm Đức Trí, Nguyễn Thị Thanh, Nguyễn Hữu Hổ (2012). Bước đầu chuyển gen Bt vào cây mía (Saccharum officinarum L.). Tạp chí Sinh học, 34:170-179.

    Arencibia A.D., Vaquez R.I., Prieto D., Tellez P., Carmona E.R., Coego A., Hernandez L., de La Riva G.A., Housein G.S. (1997). Transgenic sugarcane plants resistant to stem borer attack. Mol. Breed., 3: 247-255.

    Arvinth S., Arun S., Selvakesavan R. K., Srikanth J., Mukunthan N., Ananda Kumar P., Premachandran M. N., Subramonian N. (2010). Genetic transformation and pyramiding of aprotinin-expressing sugarcane with cry1Ab for shoot borer (Chilo infuscatellus) resistance. Plant Cell Rep., 29: 383-395.

    Arvinth S., Selvakesavan R.K., Subramonian N., Premachandran M.N. (2009). Transmission and expression of transgenes in progeny of sugarcane clones with cry1Ab and aprotinin genes, Sug. Tech., 11 (3): 290-295.

    Bohorova N., Frutos R., Royer M., Estanol P., Pacheco M., Rascon Q., Mclean S., Hoisington D. (2001). Novel synthetic Bacillus thuringiensis cry1B gene and the cry1B-cry1Ab translational fusion confer resistance to southwestern corn borer, sugarcane borer and fall armyworm in transgenic tropical maize". Theor. A. Gen, 103: 817-826.

    Braga D.P.V., Arrigoni E.D.P., Silvia-Filho M.C., Ulian E.C. (2003). Expression of the Cry1Ab protein in genetically modified sugarcane for the control of Diatraea saccharalis (Lepidoptera:Crambidae). J. New Seeds, 5: 209-222.

    Casali N., Preston A. (2003). Methods in molecular Biology. E.coli plasmid vector. Methods and applications. Humana Press, 235: 316.

    Christou P., Capell T., Kohli A., Gatehouse J.A., Gatehouse A.M.R. (2006). Recent developments and future prospects in insect pest control in transgenic crops. TRENDS in Plant Science, 11 (6): 302-308.

    De Maagd R.A., Bravo A., Crickmore N. (2001). How Bacillus thuringiensis has evolved specific toxins to colonize the insect world. TRENDS in Genetics, 17 (4): 193-199.

    Enriquez-Obregon G. A., Vazquez-Padron I.R., Prieto-Samsonov L.D., De la Riva A.G., Selman-Housein G. (1998). Herbicide-resistant sugarcane (Saccharum offcinarum L.) plants by Agrobacterium-mediated transformation. Planta., 206: 20-27.

    Envirologix Inc. (2012). Lateral Flow QuickStixTM Strip Kit.

    Fauconnier R. (1993). Sugar cane, Macmillan Press Ltd, London, UK.

    GE Healthcare (2006). Amersham ECL Direct Nucleic AcidLabelling And Detection Systems

    Ho N.H., Baisakh N., Oliva N, Datta K, Frutos R, Datta S.K. (2006). Translational fusion hybrid bt genes confer resistance against yellow stem borer in transgenic elite vietnamese rice (Oryza sativa L.) Cultivars. Crop Sci., 46: 781-789.

    Kim S., Kim C., Li W., Kim T., Li Y., Zaidi M.A., Altosaar I. (2008). Inheritance and field performance of transgenic Korean Bt rice lines resistant to rice yellow stem borer. Euphytica, 164: 829-839.

    Santosa D.A., Hendroko R., Farouk A., Greiner R. (2004). A rapid and highly efficient method for transformation of sugarcane callus. Mol. Biotechnol., 28(2): 113-9.

    Schnepf H.E., Crickmore N., Van Rie N., Dereclus J., Baum J., Feitelson J., Zeigler D.R., Dean D.H. (1998). Bacillus thuringiensis and its pesticidal crystal proteins. Microbiol. Mol. Biol. Rev., 62: 775-806.

    Valderrama A.M., Velasquez N., Rodriguez E., Zapata A., Zaidi M.A., Altosaar I., Arango R. (2007). Resistance to Tecia solanivora (Lepidoptera : Gelechiidae) in three transgenic Andean varieties of potato expressing Bacillus thuringiensis Cry1Ac protein. J. Econ. Entomol., 100: 172-179.