Biểu hiện của gen ALF liên quan đến miễn dịch sau khi sử dụng chất kích thích miễn dịch trong tôm he Nhật Bản

Date Received: 31-07-2025

Date Published: 06-08-2025

##submissions.doi##: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2017.15.9.

Views

0

Downloads

0

Issue: Vol. 15 No. 9 (2017)

Section:

CHĂN NUÔI – THÚ Y – THỦY SẢN

How to Cite:

Hanh, V., & Huong, L. (2025). Biểu hiện của gen ALF liên quan đến miễn dịch sau khi sử dụng chất kích thích miễn dịch trong tôm he Nhật Bản. Vietnam Journal of Agricultural Sciences, 15(9). https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2017.15.9.

Biểu hiện của gen ALF liên quan đến miễn dịch sau khi sử dụng chất kích thích miễn dịch trong tôm he Nhật Bản

Vu Duc Hanh (*) , Lai Thi Lan Huong

  • Tác giả liên hệ: [email protected]

    • Keywords

    Anti-lipopolysaccharide factor (ALF), biểu hiện gen, chất kích thích miễn dịch, định lượng real-time PCR, tôm Kuruma

    Abstract


    Chất kích thích miễn dịch là chất giúp tăng cường hoạt động của hàng rào miễn dịch và tác động đến các gen liên quan miễn dịch để bảo vệ của vật chủ. Ex400 được sản xuất từ vi tảo và Euglena là chất kích thích miễn dịch trên tôm được sử dụng để xác định biểu hiện của gen ALF trong tôm he Nhật Bản. ARN tổng số được chiết xuất từ các cơ quan lympho, ruột và máu của tôm tại các thời điểm 0, 3, 7 và 10 ngày sau khi cho tôm ăn Ex400. Trong ruột và cơ quan lympho của tôm, biểu hiện của gen ALF cao hơn so với lô đối chứng tại các thời điểm 3 ngày sau khi cho tôm ăn Ex400 (P< 0.01). Kết quả mức độ biểu hiện của gen ALF cho thấy chất kích thích miễn dịch có thể kích hoạt ALF trong hàng rào miễn dịch trong ruột và cơ quan lympho của tôm he Nhật Bản..

    References

    Bachère, E., Gueguen, Y., Gonzalez, M., De Lorgeril, J., Garnier, J., & Romestand, B. (2004). Insights into the antimicrobial defense of marine invertebrates: the penaeid shrimps and the oyster Crassostrea gigas. Immunological reviews,

    (1): 149-168.

    Beale, K., Towle, D., Jayasundara, N., Smith, C., Shields, J., Small, H., & Greenwood, S. (2008). Anti-lipopolysaccharide factors in the American lobster Homarus americanus: Molecular characterization and transcriptional response to Vibrio fluvialis challenge. Comparative Biochemistry and Physiology Part D: Genomics and Proteomics, 3(4): 263-269.

    Boonyaratpalin, S., Boonyaratpalin, M., Supamattaya, K., & Toride, Y. (1995). Effects of peptidoglycan (PG) on growth, survival, immune response, and tolerance to stress in black tiger shrimp, Penaeus monodon. Diseases in Asian Aquaculture II. Fish Health Section. Manila, Philippines: Asian Fisheries Society, pp. 469-477.

    Burgents, J. E., Burnett, L. E., Stabb, E. V., & Burnett, K. G. (2005). Localization and bacteriostasis of Vibrio introduced into the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Developmental & Comparative Immunology, 29(8): 681-691.

    El-Asely, A., Shaheen, A., Abbass, A., Inada, M., Okugawa, S., Tachikawa, Y., . . . Itami, T. (2011). Changes in the immune-related gene expression of kuruma shrimp Marsupenaeus japonicus in response to dietary inclusion of Macrophage Activating Chinese Herbs (MACH). Paper presented at the Proceedings of the 4th Global Fisheries and Aquaculture Research Conference, the Egyptian International Center for Agriculture, Giza, Egypt, 3-5 October 2011.

    Jayabalan, N., Chandran, R., Sivakumar, V., & Ramamoorthi, K. (1982). Occurrence of luminescent bacteria in sediments: Current science Assn CV raman avenue, Po Box 8005, Bangalore 560 080, India. 51: 710-711.

    Johnson, P. T. (1987). A review of fixed phagocytic and pinocytotic cells of decapod crustaceans, with remarks on hemocytes. Developmental & Comparative Immunology, 11(4): 679-704.

    Liuxy, P. C., Lee, K. K., & Chen, S. N. (1996). Pathogenicity of different isolates of Vibrio harveyi in tiger prawn, Penaeus monodon. Letters in applied microbiology, 22(6): 413-416.

    Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2− ΔΔCT method. methods, 25(4): 402-408.

    Maeda, M., Shibata, A., Biswas, G., Korenaga, H., Kono, T., Itami, T., & Sakai, M. (2014). Isolation of lactic acid bacteria from kuruma shrimp (Marsupenaeus japonicus) intestine and assessment of immunomodulatory role of a selected strain as probiotic. Marine biotechnology, 16(2): 181-192.

    Mekata, T., Sudhakaran, R., Okugawa, S., Kono, T., Sakai, M., & Itami, T. (2010). Molecular cloning and transcriptional analysis of a newly identified antilipopolysaccharide factor gene in kuruma shrimp, Marsupenaeus japonicus. Letters in applied microbiology, 50(1): 112-119.

    Miyata, T., TOKUNAGA, F., NAKAMURA, T., & IWANAGA, S. (1987). Primary structure of anti-lipopolysaccharide factor from American horseshoe crab, Limulus polyphemus. Journal of biochemistry, 101(6): 1321-1330.

    Oka, M. (1969). Studies on Penaeus orientalis Kishinouye-VIII. Structure of the newly found lymphoid organ. Bull Jpn Soc Sci Fish, 35: 245-250.

    Raa, J. (1996). The use of immunostimulatory substances in fish and shellfish farming. Reviews in Fisheries Science, 4(3): 229-288.

    Selsted, M. E., & Ouellette, A. J. (2005). Mammalian defensins in the antimicrobial immune response. Nature immunology, 6(6): 551-557.

    Sordillo, L., Shafer-Weaver, K., & DeRosa, D. (1997). Immunobiology of the mammary gland. Journal of dairy science, 80(8): 1851-1865.

    Tanekhy, M., & Fall, J. (2015). Expression of innate immunity genes in kuruma shrimp Marsupenaeus japonicus after in vivo stimulation with garlic extract (allicin). Veterinarni Medicina, 60(1): 39-47.

    Van de Braak, C., Botterblom, M., Taverne, N. v., Van Muiswinkel, W., Rombout, J., & Van der Knaap, W. (2002). The roles of haemocytes and the lymphoid organ in the clearance of injected Vibrio bacteria in Penaeus monodon shrimp. Fish & shellfish immunology, 13(4): 293-309.