ẶC ĐIỂM SINH HỌC CỦA CHỦNG XẠ KHUẨN BIỂN VD111 SINH CHẤT KHÁNG KHUẨN

Ngày nhận bài: 12-06-2014

Ngày duyệt đăng: 20-09-2014

Ngày xuất bản: 06-08-2025

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.8.

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 12 Số 8 (2014)

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Trang, P., Huyền, P., Hy, L., Tiến, P. ., Tuyên, H., Giang, N., & Nhuệ, N. (2025). ẶC ĐIỂM SINH HỌC CỦA CHỦNG XẠ KHUẨN BIỂN VD111 SINH CHẤT KHÁNG KHUẨN. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 12(8), 1258–1265. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2014.12.8.

ẶC ĐIỂM SINH HỌC CỦA CHỦNG XẠ KHUẨN BIỂN VD111 SINH CHẤT KHÁNG KHUẨN

Phạm Thu Trang 1, 2 , Phạm Thanh Huyền 1, 2 , Lê Gia Hy 1, 2 , Phí Quyết Tiến 1, 2 , Hồ Tuyên 1, 2 , Nguyễn Văn Giang 1, 2 , Nguyễn Phương Nhuệ (*) 1, 2

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Viện Công nghệ sinh học, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
  • 2 Khoa Công nghệ sinh học, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    Chất kháng sinh, đặc điểm sinh học, hoạt tính kháng khuẩn, xạ khuẩn biển, Streptomyces albogriseolus VD111

    Tóm tắt


    Ngày nay, việc sử dụng chất kháng sinh không hợp lý đã làm cho hiện tượng kháng thuốc phát triển và ngày càng lan rộng. Do đó, việc tìm ra những chất kháng sinh mới có nguồn gốc từ vi sinh vật biển đang thu hút sự quan tâm của các nhà khoa học. Bài báo này trình bày một số kết quả về đặc điểm sinh học và hoạt tính kháng khuẩn của chủng xạ khuẩn biển VD111. Theo khóa phân loại Bergey (1989) và phương pháp của Chương trình xạ khuẩn Quốc tế (ISP), chủng VD111 có các đặc điểm giống với chủng chuẩn Streptomyces albogriseolus ISP 5003. Điều kiện sinh trưởng tốt nhất của chủng là ở 37oC, pH = 7-8, nồng độ NaCl từ 7-10%. Môi trường thích hợp để chủng VD111 sinh chất kháng khuẩn là A4H (g/l): Glucoza 15; bột đậu tương 15; NaCl 5; CaCO3 1; pH=7; với tỷ lệ tiếp giống 5% và tuổi giống 48 giờ, thời điểm thích hợp để thu hồi chất kháng khuẩn là sau 60 giờ lên men, sinh khối đạt 10,6 mg/ml, đường kính vòng kháng khuẩn kháng Bacillus subtilis ATCC6633 đạt 30,2mm. Chất kháng khuẩn của chủng VD111 có khả năng ức chế vi khuẩn Gram dương, Gram âm (trong đó có Staphylococcus aureus kháng methicillin) và kháng nấm men gây bệnh Candida albicans ATCC 10231.

    Tài liệu tham khảo

    Alanis A. J., (2005). Resistance to antibiotics: are we in the post-antibiotic era? Archives of Medical. Research, 36: 697-705.

    Ashadevi N.K., (2005). Isolation and identification of marine actinomycetes and their potential in antimicrobial activity. Pakistan J. Biological Sciences, 9(3): 470-472.

    Aslan B., (1999). Studies on isolation, characterization and antibiotic production of Streptomyces species. PhD thesis, Cukurova University, Institute of Science, Adana.

    Barrett C.T., Barrett J.F., (2003). Antibacterials: are the new entries enough to deal with the emerging resistance problems? Current Opinion in Biotechnology, 14: 621-626.

    Nguyễn Văn Cách (2004). Công nghệ lên men các chất kháng sinh, Nhà xuất bản Khoa học và Kĩ thuật, Hà Nội.

    Nguyễn Văn Cách, Lê Văn Nhương (2009). Cơ sở công nghệ sinh học, tập 4 - công nghệ vi sinh, Nhà xuất bản Giáo dục Việt Nam

    Ceylan O., G. Okmen, A. Ugur (2008). Isolation of soil Streptomyces as source antibiotics active against antibiotic-resistant bacteria. EurAsia Journal of BioSciences, 2: 73-82.

    Nguyễn Lân Dũng (dịch, 1983). Thực tập vi sinh vật học, Nhà xuất bản Khoa học và Kỹ thuật, Hà Nội, tr. 73-81.

    Gulve R.M., A.M. Deshmukh (2012). Antimicrobial activity of the marine actinomycetes. International Multidisciplinary Research Journal, 2(3):16-22.

    Li X.L., Xu M.J., Zhao Y.L., Xu J. (2013). A novel benzo[f][1,7] naphthyridine produced by Streptomyces albogriseolus from mangrove sediments. Molecules, 15: 9298-9307.

    Michael A Kohanski, Daniel J Dwyer, James J Collins, 2010. How antibiotics kill bacteria: from targets to network. Nat Rev Microbiol., 8(6): 423 - 435.

    Sambrook J, Fritsch E F, Maniatis T (1989) Molecular cloning, A laboratory manual, 2nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York.

    Shaaban Mohamed, Abdel-Razik Ahmed S, Abdel-Aziz Mohamed S, AbouZied Azza A., Fadel Mohamed (2013). Bioactive Secondary Metabolites from marine Streptomyces albogriseolus isolated from Red Sea Coast. Journal of Applied Sciences Research, 9(1): 996.

    Shirling E.B., Gottlieb D. (1966). International of systematic bacteriology: Method for characterization of Streptomyces species. Derpartment of Botany and Bacteriology Ohio Wesleyan University, Delaware, Ohio and Derpartment of Plant Pathology University of Illinois, Urbana, Illinois.

    Sirisha B., R. Harith, YSYV. Jagan Mohan, K. Siva Kumar, T. Ramana (2013). Bioactive compounds from marine actinomycetes isolated from the sediments of bay of Bengal. IJPCBS 2013, 3(2): 257-264.

    Stanley T. Williams M. E. Sharpe, J. G. Holt (1989). Bergey’s Mannual of Systematic bacteriology, Williams & Wilkins, 4: 2452-2492.

    Tresner H. D., E.J.B. (1963). System of Color Wheels for Streptomycete Taxonomy. Appl. Microbiol., 11: 8.

    Zeng Q., Huang H., Zhu J., Fang Z., Sun Q., Bao S. (2013). A new nematicidal compound produced by Streptomyces albogriseolus HA10002. Antonie van Leeuwenhoek, 103: 1107-1111.