PHÂN LẬP VÀ TUYỂN CHỌN CÁC CHỦNG Bacillus amyloliquefaciens CÓ KHẢ NĂNG ĐỐI KHÁNG VỚI VI KHUẨN Salmonella gallinarum

Ngày nhận bài: 01-01-2026

Ngày duyệt đăng: 30-12-2025

Ngày xuất bản: 23-01-2026

DOI: https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2026.24.1.07

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 24 Số 1 (2026): Tạp chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam

Chuyên mục:

CHĂN NUÔI – THÚ Y – THỦY SẢN

Cách trích dẫn:

Đức, H., Hằng, N., Lan, N., Hà, C., Hoà, T., Linh, P., & Sơn, H. (2026). PHÂN LẬP VÀ TUYỂN CHỌN CÁC CHỦNG Bacillus amyloliquefaciens CÓ KHẢ NĂNG ĐỐI KHÁNG VỚI VI KHUẨN Salmonella gallinarum. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 24(1), 60–69. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2026.24.1.07

PHÂN LẬP VÀ TUYỂN CHỌN CÁC CHỦNG Bacillus amyloliquefaciens CÓ KHẢ NĂNG ĐỐI KHÁNG VỚI VI KHUẨN Salmonella gallinarum

Hoàng Minh Đức 1 , Nguyễn Thị Thu Hằng 1 , Nguyễn Thị Lan 1 , Cam Thị Thu Hà (*) 1 , Trần Thị Khánh Hoà 1 , Phạm Thuỳ Linh 1 , Hoàng Minh Sơn 1

  • Tác giả liên hệ: [email protected]
  • 1 Khoa Thú y, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    Chế phẩm sinh học, kháng kháng sinh, thương hàn gà

    Tóm tắt


    Probiotics là một trong những chế phẩm sinh học phổ biến nhất sử dụng để thay thế kháng sinh nhằm mục đích phòng bệnh và kích thích sinh trưởng cho vật nuôi. Vi khuẩn Bacillus amyloliquefaciens (B. amyloliquefaciens) được biết đến với nhiều đặc tính phù hợp để tạo chế phẩm probiotics bao gồm khả năng đề kháng với nhiệt độ cao, pH thấp, muối mật và sản sinh chất kháng khuẩn. Nghiên cứu này được thực hiện với mục đích phân lập và tuyển chọn vi khuẩn B. amyloliquefaciens có khả năng đối kháng với vi khuẩn Salmonella gallinarum gây bệnh thương hàn gà. Kết quả nghiên cứu đã phân lập và định danh được 4 chủng vi khuẩn B. amyloliquefaciens từ 100 mẫu phân của gà khoẻ mạnh bằng phương pháp nuôi cấy và công nghệ khối phổ MALDI TOF. Tất cả chủng vi khuẩn B. amyloliquefaciens phân lập đều không gây dung huyết trên thạch máu và có tính ổn định cao trong môi trường bất lợi (pH = 3,0 và muối mật 0,3%) với tỷ lệ sống sót > 80%. Kết quả kiểm tra tính mẫn cảm với kháng sinh cho thấy cả 4/4 (100%) các chủng B. amyloliquefaciens phân lập đều có khả năng kháng tetracycline và 3/4 (75%) chủng kháng erythromycin. Các chủng phân lập cũng thể hiện tính đối kháng cao với vi khuẩn Salmonella gallinarum (S. gallinarum) trong điều kiện phòng thí nghiệm, tạo ra vòng vô khuẩn với đường kính >16 mm.

    Tài liệu tham khảo

    Abriouel H., Franz C.M.A. Omar P., Ben N. & Galvez A. (2011). Diversity and applications of Bacillus bacteriocins. FEMS Microbiology Reviews. 35(1): 201-232.

    Afrin S. & Bhuiyan M.N.I. (2019). Antagonistic activity of Bacillus amyloliquefaciens subsp. amyloliquefaciens against multidrug resistant Serratia rubidaea. Current Research in Microbial Sciences. 5: 818054.

    Ahmed S.T., Islam M.M., Mun H.S., Sim H.J., Kim Y.J. & Yang C.J. (2014). Effects of Bacillus amyloliquefaciens as a probiotic strain on growth performance, cecal microflora, and fecal noxious gas emissions of broiler chickens. Poultry Science, 93(8): 1963-1971.

    Aikun Fu, Qiufen Mo, Yanping Wu, Baikui Wang, Rongrong Liu, Li Tang, Zhonghua Zeng, Xiaoping Zhang & Weifen Li (2019). Protective effect of Bacillus amyloliquefaciens against Salmonella via polarizing macrophages to M1 phenotype directly and to M2 depended on microbiota. Food and Function. 10(12): 7653-7666.

    Baharudin M.M.A.A., Ngalimat M.S., Shariff F.M., Yusof Z.N.B., Karim M., Baharum S.N. & Sabri S. (2021). Antimicrobial activities of Bacillus velezensis strains isolated from stingless bee products against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. PLoS ONE. 16(5): e0251514.

    Barrow P.A. & Freitas Neto O.C. (2011). Pullorum disease and fowl typhoid-new thoughts on old diseases: A review. Avian Pathology. 40 (1): 1465-3338.

    Boottanun P., Potisap C., Hurdle J.G. & Sermswan R.W. (2017). Secondary metabolites from Bacillus amyloliquefaciens isolated from soil can kill Burkholderia pseudomallei. AMB Express. 7(1): 1-11.

    Chang X., Wu Z., Wu S., Dai Y. & Sun C. (2015). Degradation of ochratoxin A by Bacillus amyloliquefaciens ASAG1. Food Additives and Contaminants - Part A Chemistry, Analysis, Control, Exposure and Risk Assessment. 32(4): 564-571.

    CLSI (2015). M45| Methods for Antimicrobial Dilution and Disk Susceptibility Testing of Infrequently Isolated or Fastidious Bacteria. 3rd Edition.

    Das B.K., Nidhi R.G.N., Roy P., Muduli A.K., Swain P., Mishra S.S. & Jayasankar P. (2014). Antagonistic activity of cellular components of Bacillus subtilis AN11 against bacterial pathogens. In Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci. 3(5): 795-809.

    Du H., Yao W., Fakhar-E- M., Kulyar A., Ding Y., Zhu H., Pan H., Li K., Bhutta Z.A., Liu S. & Li J. (2022). Effects of Bacillus amyloliquefaciens TL106 Isolated from Tibetan Pigs on Probiotic Potential and Intestinal Microbes in Weaned Piglets. Microbiology Spectrum. 10(1): e01205-21.

    EFSA (2012). Guidance on the assessment of bacterialsusceptibility to antimicrobials of human and veterinaryimportance. EFSA Journal. 10(6): 2740.

    EFSA (2014). Guidance on the assessment of the toxigenic potential of Bacillus species used in animal nutrition. EFSA Journal. 12(5): 1-10.

    Ezema W.S., Onuoha E. & Chah K.F. (2009). Observations on an outbreak of fowl typhoid in commercial laying birds in Udi, South Eastern Nigeria. Comparative Clinical Pathology. 18(4): 395-398.

    Farahani R.K., Ebrahimi-Rad M., Shahrokhi N., Farahani A.H.K., Ghafouri S.A., Rezaei M., Gharibzadeh S., Langeroudi A.G. & Ehsani P. (2023). High prevalence of antibiotic resistance and biofilm formation in Salmonella Gallinarum. Iranian Journal of Microbiology, 15(5): 631.

    Golnari M., Bahrami N., Milanian Z., Rabbani Khorasgani M., Asadollahi M.A., Shafiei R. & Fatemi S.S.A. (2024). Isolation and characterization of novel Bacillus strains with superior probiotic potential: comparative analysis and safety evaluation. Scientific Reports. 14(1): 1457.

    Gracia M.I., Araníbar M.J., Lázaro R., Medel P. & Mateos G.G. (2003). Alpha-amylase supplementation of broiler diets based on corn. Poultry Science. 82(3): 436-442.

    Haque M.A., Wang F., Chen Y., Hossen F., Islam M.A., Hossain M.A., Siddique N., He C. & Ahmed F. (2022). Bacillus spp. Contamination: A Novel Risk Originated From Animal Feed to Human Food Chains in South-Eastern Bangladesh. Frontiers in Microbiology. 12: 783103.

    Ismat Jahan Anee, Shamimul Alam, Rowshan Ara Begum, Reza Md Shahjahan & Ashfaqul Muid Khandaker (2021). The role of probiotics on animal health and nutrition. The Journal of Basic and Applied Zoology. 82: 52.

    Ji J., Hu S. & Li W. (2013). Probiotic Bacillus amyloliquefaciens SC06 Prevents Bacterial Translocation in Weaned Mice. Indian Journal of Microbiology. 53(3): 323-328.

    Jini R., Swapna H.C., Rai A.K., Vrinda R., Halami P.M., Sachindra N.M. & Bhaskar N. (2011). Isolation and characterization of potential lactic acid bacteria (LAB) from freshwater fish processing wastes for application in fermentative utilisation of fish processing waste. Brazilian Journal of Microbiology. 42(4): 1516-1525.

    Lê Lưu Phương Hạnh, Nguyễn Hoàng Chi Mai, Trần Ngọc Phương Linh, Lê Văn Hậu, Nguyễn Đăng Quân & Ngô Huỳnh Phương Thảo (2021). Hoạt động đối kháng của chủng Bacillus amyloliquefaciens B894 với vi khuẩn Edwardsiella ictaluri và Aeromonas hydrophila. Tạp chí Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp Việt Nam. 01(122): 113-119.

    Lee Y.J., Kim B.K., Lee B.H., JoK.I., Lee N.K., Chung C.H., Lee Y.C. & Lee J.W. (2008). Purification and characterization of cellulase produced by Bacillus amyoliquefaciens DL-3 utilizing rice hull. Bioresource Technology. 99(2): 378-386.

    Lu H., Yang P., Zhong M., Bilal M., Xu H., Zhang Q., Xu J., Liang N., Liu S., Zhao L., Zhao Y. & Geng C. (2023). Isolation of a potential probiotic strain Bacillus amyloliquefaciens LPB-18 and identification of antimicrobial compounds responsible for inhibition of food-borne pathogens. Food Science and Nutrition. 11(5): 2186-2196.

    Michael A. Jones, Paul Wigley, Kerrie L. Page, Scott D. Hulme & Paul A. Barrow. (2001). Salmonella enterica serovar Gallinarum requires the Salmonella pathogenicity island 2 type III secretion system but not the Salmonella pathogenicity island 1 type III secretion system for virulence in chickens. Infection and Immunity. 69(9): 5471-5476.

    Mingmongkolchai S. & Panbangred W. (2018). Bacillus probiotics: an alternative to antibiotics for livestock production. Journal of Applied Microbiology. 124(6): 1334-1346.

    Nguyễn Duy Linh, Nguyễn Phạm Ánh Dương, Lê Phương Uyển Nhi, Lê Hữu Ngọc, Đường Chi Mai & Lê Thanh Hiền (2025). Tiềm năng probiotic và khả năng kháng Escherichia coli, Salmonella của vi khuẩn Bacillus amyloliquefaciens. Tạp chí Nông nghiệp và Phát triển. 24(4): 54-65.

    Nguyen H.A., Dam H.T., Van Nguyen H., Le T.H., Ho P.H. & Huong N.L. (2024). Whole genome sequence analysis of Bacillus amyloliquefaciens strain S2. 5 as a potential probiotic for feed supplement in livestock production. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology. 22(3): 100404.

    OIE (2023). Fowl typhoid. World Organisation for Animal Health.

    Ritter A.C., Paula A., Correa F. Fonseca Veras F. & Brandelli A. (2018). Characterization of Bacillus subtilis Available as Probiotics. Journal of Microbiology Research. 8(2): 23-32.

    Rodrigues Alves L.B., Freitas Neto O.C. de, Saraiva M. de M.S., do Monte D.F.M., de Lima B.N., Cabrera J.M., Barbosa F. de O., Benevides V.P., de Lima T.S., Campos I.C., Rubio M. da S., Nascimento C. de F., Arantes L.C.R.V., Alves V.V., de Almeida A.M., Olsen J.E. & Berchieri Junior A. (2024). Salmonella Gallinarum mgtC mutant shows a delayed fowl typhoid progression in chicken. Gene. 892: 147827.

    Shehata M.G., El Sohaimy S.A., El-Sahn M.A, & Youssef M.M. (2016). Screening of isolated potential probiotic lactic acid bacteria for cholesterol lowering property and bile salt hydrolase activity. Annals of Agricultural Sciences. 61(1): 65-75.

    Shubham Gupta, Upasana Mohanty & Ranendra K. Majumdar (2021). Isolation and characterization of lactic acid bacteria from traditional fermented fish product Shidal of India with reference to their probiotic potential. LWT. 146: 111641.

    Siahmoshteh F., Siciliano I., Banani H., Hamidi-Esfahani Z., Razzaghi-Abyaneh M., Gullino M.L. & Spadaro D. (2017). Efficacy of Bacillus subtilis and Bacillus amyloliquefaciens in the control of Aspergillus parasiticus growth and aflatoxins production on pistachio. International Journal of Food Microbiology, 254: 47-53.

    Zulkhairi Amin F.A., Sabri S., Ismail M., Chan K.W., Ismail N., Mohd Esa N., Mohd Lila M.A. & Zawawi N. (2019). Probiotic Properties of Bacillus Strains Isolated from Stingless Bee (Heterotrigona itama) Honey Collected across Malaysia. International Journal of Environmental Research and Public Health. 17(1): 278.